Elaboración de un filtrante de hojas secas de Borago officinalis L. “borraja”, determinación de su contenido de polifenoles y capacidad antioxidante

Teresita de Jesús Chiroque-Reyes; Oscar Pedro Santisteban-Rojas; César Máximo Fuertes-Ruitón; Scila Reategui-Sanchez; Raul German Pizarro-Cabrera

doi:10.17268/agroind.sci.2024.03.02

Autores/as

Teresita de Jesús Chiroque-Reyes Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Facultad de Química e Ingeniería Química. Lima, Perú. https://orcid.org/0009-0003-8498-0885
Oscar Pedro Santisteban-Rojas Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Facultad de Química e Ingeniería Química. Lima, Perú. https://orcid.org/0000-0002-0126-4142
César Máximo Fuertes-Ruitón Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Facultad de Farmacia y Bioquímica. Lima, Perú. https://orcid.org/0000-0002-6170-3549
Scila Reategui-Sanchez Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Facultad de Química e Ingeniería Química. Lima, Perú. https://orcid.org/0000-0002-3284-1256
Raul German Pizarro-Cabrera Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Facultad de Química e Ingeniería Química. Lima, Perú. https://orcid.org/0000-0003-1001-816X

DOI:

https://doi.org/10.17268/agroind.sci.2024.03.02

Palabras clave:

Borago officinalis L., DPPH, ABTS, polifenoles totales, infusión, filtrante

Resumen

Esta investigación buscó obtener las condiciones ideales de secado de las delicadas y frágiles hojas de borraja, elaborar un filtrante y determinar el contenido poli fenólico total y la capacidad antioxidante en la infusión del filtrante. Para ello, se deshidrataron las hojas frescas de borraja. Se prepararon infusiones de hojas frescas enteras y cortadas, hojas secas enteras y molidas (filtrante). Todas las infusiones contenían el equivalente a 1 g hoja seca en 250 mL de infusión. La concentración de polifenoles totales se determinó con el reactivo de Folin Ciocalteau, expresando los resultados en equivalente de ácido gálico. La capacidad antioxidante se determinó mediante los métodos DPPH y ABTS expresando resultados en su equivalente Trolox. Los resultados de polifenoles totales en infusiones de hojas frescas (enteras y cortadas), secas enteras y en filtrante fueron 9,60, 28,08, 26,59 y 10,75 mg ácido gálico/g hoja seca, respectivamente. La capacidad antioxidante frente al radical DPPH fueron 19,27 (hoja fresca entera), 58,56 (hoja fresca en trozos o cortada), 39,06 (hoja seca entera) y 13,83 (filtrante) mg Trolox/g hoja seca. La capacidad antioxidante frente al radical ABTS fueron 13,85 (hoja fresca entera), 53,74 (hoja fresca en trozos o cortada), 55,37 (hoja seca entera) y 21,78 (filtrante) en mg Trolox/g hoja seca. El filtrante cumplió con la normativa microbiológica y recibió una valoración sensorial positiva, sugiriendo su viabilidad comercial. Se concluye que el filtrante de hojas secas molidas de borraja es una fuente accesible y manejable de antioxidantes, con potencial para su comercialización.

Citas

Abu-Qaoud, H., Shawarb, N., Hussen, F., Jaradat, N., & Shtaya, M. (2018). Report: Comparison of qualitative, quantitative analysis and antioxidant potential between wild and cultivated Borago officinalis leaves from Palestine. Pakistan Journal of Pharmaceutical Sciences, 31(3), 953–959.

Aumasa, T., Ogawa, Y., Singh, J., Panpipat, W., & Donlao, N. (2023). The role of herbal teas in reducing the starch digestibility of cooked rice (Oryza sativa L.): An in vitro co-digestion study. NFS Journal, 33, 100154.

Alothman, M., Bhat, R., & Karim, A. A. (2009). Antioxidant capacity and phenolic content of selected tropical fruits from Malaysia, extracted with different solvents. Food Chemistry, 115(3), 785-788.

Alvarez, S. (2020). Capacidad antioxidante del 3,4-dihidroxibenzal-dehído frente al radical hidroperoxilo en disolución: Un enfoque teórico. ACI Avances en Ciencias e Ingenierías, 11(3), 6–33. https://doi.org/10.18272/aci.v11i3.1411

Bandonien, D., & Murkovic, M. (2002). The detection of radical scavenging compounds in crude extract of borage (Borago officinalis L.) by using an on-line HPLC-DPPH method. Journal of Biochemical and Biophysical Methods, 53(1–3), 45–49.

Blois, M. S. (1958). Antioxidant determinations by the use of a stable free radical. Nature, 181(4617), 1199–200.

Cai, Y., Luo, Q., Sun, M., & Corke, H. (2004). Antioxidant activity and phenolic compounds of 112 traditional Chinese medicinal plants associated with anticancer. Life Sciences, 74(17), 2157-2184.

Ciriano, M. G.-I. de, García-Herreros, C., Larequi, E., Valencia, I., Ansorena, D., & Astiasarán, I. (2009). Use of natural antioxidants from lyophilized water extracts of Borago officinalis in dry fermented sausages enriched in ω-3 PUFA. Meat Science, 83(2), 271–277.

Csicsor, A., Tombácz, E., & Kulcsár, P. (2023). Antioxidant potential of humic substances measured by Folin-Ciocalteu, CUPRAC, QUENCHER-CUPRAC and ESR methods. Journal of Molecular Liquids, 391(123294), 123294. https://doi.org/10.1016/j.molliq.2023.123294

Francenia, S., Salas-Coronado, R., Villanueva-Cañongo, C., & Hernández-Carlos, B. (2019). Antioxidant compounds and their antioxidant mechanism. En E. Shalaby (Ed.), Antioxidants. IntechOpen.

García-Herreros, C., García-Iñiguez, M., Astiasarán I., & Ansorena, D. (2010). Antioxidant activity and phenolic content of water extracts of Borago officinalis L.: Influence of plant parts and cooking procedures. Italian Journal of Food Science, 22(2), 156.

Hayat, K., Zhang, X., Farooq, U., Abbas, S., Xia, S., Jia, C., & Zhang, J. (2010). Effect of microwave treatment on phenolic content and antioxidant activity of citrus mandarin pomace. Food Chemistry, 123(2), 423-429.

Losada-Barreiro, S., Sezgin-Bayindir, Z., Paiva-Martins, F., & Bravo-Díaz, C. (2022). Biochemistry of antioxidants: Mechanisms and pharmaceutical applications. Biomedicines, 10(12), 3051. https://doi.org/10.3390/biomedicines10123051

Mohajer, S., Taha, R. M., Ramli, R. B., & Mohajer, M. (2016). Phytochemical constituents and radical scavenging properties of Borago officinalis y Malva sylvestris. Industrial Crops and Products 94(30), 673-681.

Nimse, S. B., & Pal, D. (2015). Free radicals, natural antioxidants, and their reaction mechanisms. RSC Advances, 5(35), 27986–28006. https://doi.org/10.1039/c4ra13315c

Norma Técnica de Salud (2007). Norma Sanitaria que establece los criterios microbiológicos de calidad sanitaria e inocuidad para los alimentos y bebidas de consumo humano (NTS N° 071-MINSA/DIGESA V-01). Ministerio del Perú. Lima, Perú.

Pérez, M., Dominguez-López, I., & Lamuela-Raventós, R. M. (2023). The Chemistry Behind the Folin–Ciocalteu Method for the Estimation of (Poly)phenol Content in Food: Total Phenolic Intake in a Mediterranean Dietary Pattern. J Agric Food Chem, 71(46), 17543–53.

Shahdadi, F., & Sardoei, A. S. (2023). Antioxidant activity of methanolic extracts of Borago officinalis, Teucrium polium, Mentha aquatica and Allium taradox. Archives of Medical Laboratory Sciences, 9, 1-7 (e4).

Vara, D., & Pula, G. (2014). Reactive oxygen species: physiological roles in the regulation of vascular cells. Current molecular medicine, 14(9), 1103–1125.

Xu, B. J., & Chang, S. K. C. (2007). A comparative study on phenolic profiles and antioxidant activities of legumes as affected by extraction solvents. Journal of Food Science, 72(2), S159-S166.

Zemmouri, H., Ammar, S., Boumendjel, A., Messarah, M., El Feki, A., & Bouaziz, M. (2019). Chemical composition and antioxidant activity of Borago officinalis L. leaf extract growing in Algeria. Arabian Journal of Chemistry, 12(8), 1954–1963.