DESDIFERENCIACIÓN DE TEJIDO ENDOSPÉRMICO DE Annona muricata L. “GUANÁBANA” UTILIZANDO 2,4-D Y BAP

Autores/as

  • Julio Chico-Ruìz Laboratorio de Experimentación Vegetal. Facultad de Ciencias Biológicas. Universidad Nacional de Trujillo (UNT), Av. Juan Pablo II s/n. Ciudad Universitaria, Trujillo, PERÚ. jchico@unitru.edu.pe // https://orcid.org/0000-0002-7287-321X. Autor para correspondencia.
  • Yajaira Reyna-Cabanillas Laboratorio de Experimentación Vegetal. Facultad de Ciencias Biológicas. Universidad Nacional de Trujillo (UNT), Av. Juan Pablo II s/n. Ciudad Universitaria, Trujillo, PERÚ.
  • Cristhian Tejada-Grados Laboratorio de Experimentación Vegetal. Facultad de Ciencias Biológicas. Universidad Nacional de Trujillo (UNT), Av. Juan Pablo II s/n. Ciudad Universitaria, Trujillo, PERÚ.
  • Alfredo León-Alayo Laboratorio de Experimentación Vegetal. Facultad de Ciencias Biológicas. Universidad Nacional de Trujillo (UNT), Av. Juan Pablo II s/n. Ciudad Universitaria, Trujillo, PERÚ.

Palabras clave:

Annona muricata, auxina, citoquinina

Resumen

Los reguladores del crecimiento inducen cambios en las células y órganos vegetales y una de ellos es la desdiferenciación. La guanábana presenta inconvenientes en su propagación convencional por lo cual debe ser investigado en condiciones in vitro. Por eso el interés de desdiferenciar el tejido endospérmico de Annona muricata utilzando 2,4-D y BAP. Se introdujo el explante en el medio de cultivo Murashige y Skoog (1962) que contenía 2,4-D (5 ppm) y después de 10 días se cambió el explante  a un medio que contenía BAP (10 ppm). A los 30 días no hubo variación en su peso fresco, pero si se observó divisiones celulares. Se concluye que si es posible inducir la desdiferenciación en el tejido endospérmico de guanábana.

Citas

Acosta, R.; A. Peña & R. Castro. 2011. Evaluación de medios de cultivo para la producción in vitro de Annona muricata mediante la técnica de microinjertación seriada. Acta Agronómica, 60(2): 140-146.

Azcón-Bieto, J. & M. Talón. 2013. Fundamentos de Fisiología Vegetal. 3ra ed.. Barcelona.McGraw Hill Interamericana. 669 p.

Cabra, J.; M. Sánchez & A. Schoonhoven. 2002. Taller Guanábana para Colombia y el mundo. Revista Optimización de la cadena productiva, 1: 7-16.

Echenique, M. & G. Mollo. 2020. Establecimiento in vitro de segmentos nodales de guanabana (Annona muricata L.) en la Estación Experimental Sapecho – Bolivia. Revista de Investigación e Innovación Agropecuaria y de Recursos Naturales, La Paz, 7(1): 62-68.

Fehér, A. 2015. Somatic embryogenesis - stress-induced remodeling of plant cell fate. Biochimica et Biophysica Acta - Gene Regulatory Mechanisms, 1849(4): 385–402.

Ferreira, de S. J.; R. Paiva; L. Muñiz; F. Nepamucino & G. Silveira. 2011. Organogenesis in three species of Annona (Annonaceae). Sitientibus Série Ciências Biologicas, 11(1): 82-88.

Finet, C. & Y. Jaillais. 2012. Auxology: when auxin meets plant evo-devo. Dev Biol 369:19-31.

Garay-Arroyo, A.; M. de la Paz Sánchez; B. García-Ponce; E. Álvarez-Buylla & C. Gutiérrez. 2014. La Homeostasis de las Auxinas y su importancia en el desarrollo de Arabidopsis thaliana. REB Rev Educ bioquímica 33(1):13–22. Available from: http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid= S1665-19952014000100003&lng=es&nrm=iso&tlng=es

García-Águila, L., J. Álvarez; Y. Alvarado-Capó; M. González; M. La O; D. Mirabal & C. Romero. 2012. Establecimiento in vitro de segmentos nodales de plantas jóvenes de Annona muricata. Biotecnología Vegetal 12(4): 229 – 234.

Guapacha, A. 2006. Monografía sobre el aprovechamiento de compuestos activos de la Guanábana (Annona muricata L.). Universidad Tecnológica de Pereira. 3-10.

Leiva, S.; G. Gayoso & L. Chang. 2018. Annona muricata L. “guanábana” (Annonaceae), una fruta utilizada como alimento en el Perú prehispánico. Arnaldoa 25(1): 127-140. doi: http://doi. org/10.22497/arnaldoa.251.25108.

Murashige, T & F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum 15: 472-497.

Normanly, J. 2010. Approaching cellular and molecular resolution of auxin biosynthesis and metabolism. Cold Spring Harb Perspect Biol 2:a001594:1-19.

Olmos, S.; L. Graciela & E. Galdeano. 2004. Métodos de propagación y conservación de germoplasma. En: Biotecnología y mejoramiento vegetal, eds. Viviana Echenique, Clara Rubinstein y Luis Mroginski, pp. 161-172. Buenos Aires: Ediciones INTA.

Ramírez- Villalobos, M.; A. Urdaneta & S. León. 2002. Establecimiento in vitro de explantes adultos del guanábano (Annona muricata L.) tratados con hipoclorito de sodio. Rev. Fac. Agron., 19: 48-55.

Rivero, M.; V. Ramírez & L. De Sierralta. 2001. Tipo de explante en el establecimiento in vitro del guanábano (Annona muricata L.). Rev. Fac. Agron., 18: 258-265.

Rueda, N. 2019. Actualización de los conceptos asociados con la regeneración celular en plantas. Monografia. Universidad Santander. Colombia. 87 p. https://repositorio.udes.edu.co/bitstream/001/1063/1/Actualizaci%C3%B3n%20de%20los%20conceptos%20asociados%20con%20la%20%20regeneraci%C3%B3n%20celular%20en%20plantas.pdf

Scheres, B. 2011. The role of position and lineage plant cell identity. Plant Physiol. 135, 112-114

Solís-Fuentes, J.; C. Amador-Hernández; M. Hernández-Medel & M. Durán-de-Bazúa. 2010. Caracterización fisicoquímica y comportamiento térmico del aceite de “almendra” de guanábana (Annona muricata, L). Grasas Aceites 61: 58-66.

Taiz, L. & E. Zeiger. 2002. Plant Physiology. 3rd ed. Sunderland. Sianuer Associates. USA. 675 p.

Tanaka, H.; P. Dhonukshe; P. Brewer & J. Friml. 2006. Spatiotemporal asymmetric auxin distribution: a means to coordinate plant development. Cell Mol Life Sci 63:2738-2754.

Urrea, A.; N. Veitía & I. Bermúdez. 2001. Selección in vitro de callos de papa (Solanum tuberosum ) var. Diacol Capiro empleando el filtrado crudo de Phytophthora infestans ( mont) De Bary. Actualidades Biológicas, 23 (74): 5-13.

Vanneste, S. & J. Friml. 2009. Auxin: a trigger for change in plant development. Cell 136:1005- 1016.

Yong, J.; L. Ge; Y. Ng & S. Tan. 2009. The Chemical Composition and Biological Properties of Coconut (Cocos nucifera L.) Water. Molecules 14(12):5144–64.

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Publicado

2022-04-29

Cómo citar

Chico-Ruìz, J., Reyna-Cabanillas, Y., Tejada-Grados, C., & León-Alayo, A. (2022). DESDIFERENCIACIÓN DE TEJIDO ENDOSPÉRMICO DE Annona muricata L. “GUANÁBANA” UTILIZANDO 2,4-D Y BAP. Sagasteguiana, 9(2), 89-94. Recuperado a partir de https://revistas.unitru.edu.pe/index.php/REVSAGAS/article/view/4412

Número

Vol. 9 Núm. 2 (2021): Julio - Diciembre

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