Efecto de cepa de Trichoderma sobre el desarrollo vegetativo de esquejes de Vanilla pompona, CCNN Alto Naranjillo

Alfredo I. Diáz Visitación; Luis F. Liñan Escate; Edward Isla Ramirez

doi:10.17268/agroind.sci.2025.02.04

Autores/as

Alfredo I. Diáz Visitación Facultad de ecología, Universidad nacional de San Martín, Moyobamba, Perú. https://orcid.org/0000-0001-9035-3720
Luis F. Liñan Escate Facultad de ecología, Universidad nacional de San Martín, Moyobamba, Perú. https://orcid.org/0000-0003-3628-3260
Edward Isla Ramirez Conservación Internacional (CI), Perú. https://orcid.org/0000-0002-9130-7598

DOI:

https://doi.org/10.17268/agroind.sci.2025.02.04

Palabras clave:

Biodiversidad, Ecosistema amazónico, Ecología, Trichoderma, Compuestos orgánicos

Resumen

La investigación tuvo como objetivo evaluar los efectos en el desarrollo vegetativo de esquejes de V. pompona inoculadas con cepas de Trichoderma, realizado dentro del territorio de la comunidad nativa de Alto Naranjillo. La cepa se aisló de una muestra de suelo de bosque secundario y se reprodujo en grano de arroz esterilizado. Se aplicaron dosis de 20 y 40 gramos por esqueje en dos diseños experimentales: un diseño completamente aleatorizado con esquejes de 4 nudos y un diseño en bloques con esquejes de 3, 4, 5 y 6 nudos. Los esquejes se plantaron en hojarasca bajo condiciones de sombra controlada. Los resultados mostraron que los esquejes inoculados con 40 gramos de Trichoderma nativa desarrollaron más brotes y raíces que los controles y la cepa comercial Trichoderma harzianum. El mayor número de brotes y raíces se obtuvo en esquejes con 5 y 6 nudos, y bajo un nivel de sombra de 57-60%, siendo este el ambiente más favorable. Se concluye que el uso de Trichoderma ghanense nativa es eficaz para promover el desarrollo vegetativo de Vanilla pompona, ofreciendo una alternativa sostenible al uso de agroquímicos.

Citas

Amaresan, N., Sankaranarayanan, A., Kumar, M., y Druzhinina, I. (2019). Advances in Trichoderma Biology for agricultural Applications (Springer). https://doi.org/10.1007/978-3-030-91650-3

Bridžiuvienė, D., Raudonienė, V., Švedienė, J., Paškevičius, A., Baužienė, I., Vaitonis, G., Šlepetienė, A., Šlepetys, J., y Kačergius, A. (2022). Impact of Soil Chemical Properties on the Growth Promotion Ability of Trichoderma ghanense, T. tomentosum and Their Complex on Rye in Different Land-Use Systems. Journal of Fungi, 8(85), 1-18. https://doi.org/10.3390/jof8010085

Chen, Y., Fu, Y., Xia, Y., Miao, Y., Shao, J., Xuan, W., Liu, Y., Xun, W., Yan, Q., Shen, Q., y Zhang, R. (2024). Trichoderma-secreted anthranilic acid promotes lateral root development via auxin signaling and RBOHF-induced endodermal cell wall remodeling. Cell Reports, 43(4), 114030. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2024.114030

do Prado, D., Okino-Delgado, C., Zanutto-Elgui, M., Gomes, R., Pereira, M., Jahn, L., Ludwig-Müller, J., Silva, M., Velini, E., y Fleuri, L. (2019). Screening of Aspergillus, Bacillus and Trichoderma strains and influence of substrates on auxin and phytases production through solid-state fermentation. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 19(May), 1-7. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2019.101165

GAO, X., WU, J., XU, G., y YANG, L. (2014). Isolation, Identification of Trichoderma ghanense and Optimization of Spores Production. China Biotechnology, 34(2), 84-92. https://manu60.magtech.com.cn/biotech/EN/abstract/abstract3944.shtml

Garrido, M., y Vilela, N. (2019). Capacidad antagónica de Trichoderma harzianum frente a Rhizoctonia, Nakatea sigmoidea y Sclerotium rolfsii y su efecto en cepas nativas de Trichoderma aisladas de cultivos de arroz. Scientia Agropecuaria, 10(2), 199-206. https://doi.org/10.17268/sci.agropecu.2019.02.05

Guo, Y., Tian, C., Jiao, Y., y Wang, Y. (2020). Multifaceted functions of auxin in vegetative axillary meristem initiation. Journal of Genetics and Genomics, 47(9), 591-594. https://doi.org/10.1016/j.jgg.2020.10.001

Hernández, J., Herrera, E., y Delgado, A. (2019). Variación morfológica del labelo de Vanilla pompona (Orchidaceae) en Oaxaca, México. Revista Mexicana de Biodiversidad, 90(2), 1-9. https://doi.org/10.22201/ib.20078706e.2019.90.2209%0A

Husaini, A. M., y Sohail, M. (2024). Agrochemical-free genetically modified and genome-edited crops : Towards achieving the United Nations sustainable development goals and a ’ greener ’ green revolution. Journal of Biotechnology, 389(March), 68-77. https://doi.org/10.1016/j.jbiotec.2024.04.015

Jiménez-Bremont, J., González-Pérez, E., Ortega-Amaro, M., Madrigal-Ortiz, S., Duque-Ortiz, A., y Mendoza-Mendoza, A. (2024). Volatile organic compounds emitted by Trichoderma: Small molecules with biotechnological potential. Scientia Horticulturae, 325(November 2023), 1-10. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2023.112656

Kabir, A. H., y Bennetzen, J. L. (2024). Molecular insights into the mutualism that induces iron deficiency tolerance in sorghum inoculated with Trichoderma harzianum. Microbiological Research, 281(November 2023), 1-15. https://doi.org/10.1016/j.micres.2024.127630

Kubicek, C., y Harman, G. (2002). Trichoderma & Gliocladium (Volumen 1).

Leyva-Morales, R., Vega-Arreguín, J., Amezcua-Romero, J., González-Rodríguez, A., Alarcón, A., Diaz, T., Jensen, B., y Larsen, J. (2024). Soil fungal communities associated with chili pepper respond to mineral and organic fertilization and application of the biocontrol fungus Trichoderma harzianum. Applied Soil Ecology, 201(February), 1-11. https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2024.105523

Leyva, V. E., Lopez, J. M., Zevallos-Ventura, A., Cabrera, R., Cañari-Chumpitaz, C., Toubiana, D., y Maruenda, H. (2021). NMR-based leaf metabolic profiling of V. planifolia and three endemic Vanilla species from the Peruvian Amazon. Food Chemistry, 358(January). https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2021.129365

Li, X., Liao, Q., Zeng, S., Wang, Y., y Liu, J. (2025). The use of Trichoderma species for the biocontrol of postharvest fungal decay in fruits and vegetables: Challenges and opportunities. Postharvest Biology and Technology, 219(July 2024), 1-12. https://doi.org/10.1016/j.postharvbio.2024.113236

Maruenda, H., Vico, M. D. L., Householder, J. E., Janovec, J. P., Cañari, C., Naka, A., y Gonzalez, A. E. (2013). Exploration of Vanilla pompona from the Peruvian Amazon as a potential source of vanilla essence: Quantification of phenolics by HPLC-DAD. Food Chemistry, 138(1), 161-167. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2012.10.037

Medeiros, M. O., Silva-Cardoso, I. M. de A., da Silva Costa, F. H., Queiroz, P. R. M., Eckstein, B., Xavier de Souza, A. L., y Scherwinski-Pereira, J. E. (2024). Unveiling innovations for enhancing in vitro propagation of Vanilla phaeantha Rchb.f. through the use of double-phase technique and temporary immersion bioreactor systems. Industrial Crops and Products, 216(February), 1-13. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2024.118726

Moo-koh, F. A., Cristóbal-alejo, J., y Reyes-, A. (2017). Identificación molecular de aislados de Trichoderma spp. y su actividad promotora en Solanum lycopersicum L. Redalyc, 25(71), 5-11. https://www.redalyc.org/pdf/674/67452917001.pdf

Mubeen, I., Fawzi Bani Mfarrej, M., Razaq, Z., Iqbal, S., Naqvi, S. A. H., Hakim, F., Mosa, W. F. A., Moustafa, M., Fang, Y., y Li, B. (2023). Nanopesticides in comparison with agrochemicals: Outlook and future prospects for sustainable agriculture. Plant Physiology and Biochemistry, 198(March), 1-13. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2023.107670

Murray, N. (2006). Introducción a la Botánica (Pearson (ed.); Primera ed).

Puig-Montserrat, X., Stefanescu, C., Torre, I., Palet, J., Fàbregas, E., Dantart, J., Arrizabalaga, A., y Flaquer, C. (2017). Effects of organic and conventional crop management on vineyard biodiversity. Agriculture, Ecosystems and Environment, 243(April), 19-26. https://doi.org/10.1016/j.agee.2017.04.005

Rauf, A., Subhani, M., Siddique, M., Shahid, H., Chattha, M. B., Alrefaei, A. F., Hasan Naqvi, S. A., Ali, H., y Lucas, R. S. (2024). Cultivating a greener future: Exploiting trichoderma derived secondary metabolites for fusarium wilt management in peas. Heliyon, 10(7), 1-14. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2024.e29031

Vega-Celedón, P., Canchignia, H., González, M., y Seeger, M. (2016). Revisión bibliográfica Biosintesis de ácido indol-3-acético y promoción del crecimiento de plantas por bacterias. Cultivos Tropicales, 37(especial), 33-39. https://doi.org/10.13140/RG.2.1.5158.3609

Vieira, P. M., Zeilinger, S., Brandão, R. S., Vianna, G. R., Georg, R. C., Gruber, S., Aragão, F. J. L., y Ulhoa, C. J. (2018). Overexpression of an aquaglyceroporin gene in Trichoderma harzianum affects stress tolerance, pathogen antagonism and Phaseolus vulgaris development. Biological Control, 126(July), 185-191. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2018.08.012

Ville, C. (2021). Biología (Octava edi). McGRAW-HILL.

Watteyn, C., Scaccabarozzi, D., Muys, B., Van Der Schueren, N., Van Meerbeek, K., Guizar Amador, M. F., Ackerman, J. D., Cedeño Fonseca, M. V., Chinchilla Alvarado, I. F., Reubens, B., Pillco Huarcaya, R., Cozzolino, S., y Karremans, A. P. (2022). Trick or treat? Pollinator attraction in Vanilla pompona (Orchidaceae). Biotropica, 54(1), 268-274. https://doi.org/10.1111/btp.13034

Younes, N. A., Anik, T. R., Rahman, M. M., Wardany, A. A., Dawood, M. F. A., Phan, L.-S., Abdel, A., y Mostofa, M. (2023). Effects of microbial biostimulants (Trichoderma album and Bacillus megaterium) on growth, quality attributes, and yield of onion under field conditions. Heliyon, 9(3), 1-11. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2023.e14203

Zhao, X., Zhang, Y., Cheng, Y., Sun, H., Bai, S., y Li, C. (2021). Identifying environmental hotspots and improvement strategies of vanillin production with life cycle assessment. Science of the Total Environment, 769, 144771. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2020.144771

Zhou, J., Mennig, P., Zhou, D., y Sauer, J. (2024). Shadow prices of agrochemicals in the Chinese farming sector: A convex expectile regression approach. Journal of Environmental Management, 366(July), 1-12. https://doi.org/10.1016/j.jenvman.2024.121518