Evaluación de la Dúplex PCR para el diagnóstico simultáneo de Mycobacterium spp. y Brucella spp. en bovinos
DOI:
https://doi.org/10.17268/sci.agropecu.2013.01.04Palavras-chave:
Bovinos, brucelosis, detección, tejidos, tuberculosisResumo
La tuberculosis y la brucelosis siguen siendo causas importantes de morbilidad y mortalidad en muchos países, para la detección de ambas enfermedades se requieren de herramientas eficientes y sensibles para efectivizar el diagnóstico. Este trabajo fue dirigido a evaluar y comparar la técnica de Dúplex PCR frente a la PCR anidada, para la detección de Brucella spp. (BR) y Mycobacterium spp. (TB). Se utilizó un total de 100 muestras de tejidos a partir de nódulos linfáticos traqueo bronquiales, pulmón de bovinos y, aislados bacterianos de TB y BR como controles positivos. Diez combinaciones de iniciadores dirigidos a flanquear un segmento de la secuencia 16S ARNr (BR) y el gen antígeno MPB70 (TB) fueron evaluados, el mejor resultado para la Dúplex PCR se logró con los iniciadores Bru-2F/Bru-2R para BR y para TB, Tub-1F/Tub-N-R. Los productos de amplificación fueron de 225 y 230-pb respectivamente. A fin de potencializar los resultados de la técnica propuesta, todas las muestras fueron inicialmente analizadas y comparadas entre la PCR simple y la PCR anidada (Kappa, k = 0,85) y, la concordancia entre los resultados obtenidos con la PCR anidada y la Dúplex PCR (k = 0,88), para las dos bacterias fue muy buena.Referências
Agrocalidad. 2012. Programa Nacional de control de la brucelosis. Disponible en www.agrocalidad.gob.ec/agrocalidad/images/Agrocalidad/Contenido/sanidadAnimal/docs/ programa_nacional_brucelosis_bovina.pdf.
Cardoso, M.; Cardoso, R.; Hirata, R.; Hirata, M.; Leite, C.; Santos, A; Siqueira, V.; Okano, W.; Rocha, N.; Lonardoni, M. 2009. Direct Detection of Mycobacterium bovis in Bovine Lymp Nodes by PCR. Zoonose and Public Health 56 (8): 4655 – 4700.
Cevallos, O.; Escobar, A.; Carranza, M.; Saucedo, S.; Romero, D.; Reyes, X.; Zambrano, S. 2011. Comparación de las técnicas PCR anidado y Rosa de Bengala para la detección de Brucella spp. en bovinos. Revista Ecuatoriana de Medicina y Ciencias Biológicas 32: 49 – 57.
Cosivi, O.; Grange, J.; Daborn, C.; Raviglione, M.; Fujikura, T.; Cousins, D.; Robinson, R.; Huchzermeyer, I.; De Kantor. and Meslin. F. 1998. Zoonotic tuberculosis due to Mycobacterium bovis in developing countries. Emerging Infectious Diseases 4: 59 – 70.
Cousins, D.; Wilton, S.; Francis, B.; Gow, B. 1992. Use of polymerase chain reaction for rapid diagnosis of tuberculosis. Journal of Clinical Microbiology 30: 255 – 258.
De Kantor, I.; Ritacco, V. 2006. An update on bovine tuberculosis programmes in Latin American and Caribbean countries. Vet Microbiol 112: 111 – 118.
De Waard, J.; Robledo, J. 2007. Conventional Diagnostic Methods. Inc: Tuberculosis: From Basic Science to patient care. Palomino J.C., Leaão S., Ritacco V. (Eds). (First edition). Antwerp – Sao Paolo – Buenos Aires Raderschadt.
Díaz, R.; Moriyón, I. 1989. Laboratory techniques in the diagnosis of human brucellosis. In: Brucellosis: Clinical and Laboratory Aspects. Young EJ, Corbel MJ (Eds), CRC Press, FL, USA, 73-83.
Doran, P.; Carson, J.; Costello, E.; More, S. 2009. An outbreak of tuberculosis affecting cattle and people on an Irish dairy farm, following the consumption of raw milk. Irish Veterinary Journal 62: 390 – 397.
Eisenach, K. 1998. Molecular diagnostics, in Mycobacterium-Molecular Biology and Virulence (Rutledge, C. and Dale, J., eds.). Oxford, UK: Blackwell Science.
Estrada-Chávez, C.; Díaz, F; Arriaga, C.; Villegas-Sepúlveda, N.; Pérez, R.; Gonzáles, D. 2004. Concordancia de la PCR y Métodos rutinarios para el diagnóstico de tuberculosis bovina. Veterinaria México. 35 (3): 225 – 236. .
Gouzy, A.; Nigou, J.; Gilleron, M.; Neyrolles, N. 2013. Tuberculosis 2012: biology, pathogenesis and intervention strategies; an update from the city of light. Research in Microbiology 164: 270 – 280.
Herman, L.; Ridder, H. 1992 Identification of Brucella spp. by Using the Polimerase Chain Reaction. Appl Env Microbiol 58: 2099 – 2101.
Leal-Klevezas, D.; López. Y.; Martínez, V. 1995a. Molecular detection of Brucella spp.: rapid identification of B. abortus biovar 1 using PCR. Arch Med Res 26: 263 – 267.
Leal-Klevezas, D.; Martínez-Vásquez, I.; López-Merino, O.; Martínez-Soriano, J. 1995b. Single Step PCR for the Detection of Brucella spp. From. Blood and Milk of Infected Animals. J Clin Microbiol 33: 3087 – 3090.
Martínez, V.; Irma, M. 2000. Diagnóstico simultáneo de brucelosis y tuberculosis mediante PCR-Multiplex. Bioquímica 25: 53 – 57.
Milián, F.; Harris, B.; Arriaga, C.; Thomsenb, B.; Stuberb, T.; González, D.; Álvarez, G.; Santillán, M.; Morales, A.; Estrada, C. 2010. Sensibilidad y especificidad de PCR anidada y Spoligotyping como pruebas rápidas de diagnóstico de tuberculosis bovina en tejido fresco. Rev Mex Cienc Pecu 1(4): 403 – 415.
Morales, A.; Loredo. 2000. Detección simultanea de Brucella spp. y organismos del complejo Mycobacterium tuberculosis mediante PCR-Multiplex. Bioquímica Vol. 25. Instituto Nacional de Investigaciones Forestales y Agropecuarias.
Noredhoek, G.;Van-Embden, J.; Kolk, A. 1996. Reliability of nucleic acid amplification for detection of Mycobacterium tuberculosis: an international collaborative quality control study among 30 laboratories. J Clin Microbiol 34: 2522 – 2525.
OIE. International Office of Epizootic. 2008. Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. Sixth Edition. Volume 2. Paris.
Pao, C. 1990. Detection and Identification of Mycobacterium tuberculosis by DNA Amplification. J Clin Microbiol 28: 1877 – 1880.
Romero, C.; Pardo, M.; Grillo, J.M.; Diaz, R.; Blasco, J.M.; Lopez-Goñi, I. 1995b. Evaluation of PCR and Indirect Enzyme-Linked Immunosorbent Assay on Milk Samples for Diagnosis of Brucellosis in Dairy Cattle. J Clin Microbiol. 33: 3198 – 3200.
Sambrook, J.; Fritsch, E.F.; Maniatis, T. 1989. Molecular Cloning, A Laboratory Manual. 2da Edición. Cold Spring Harbor Laboratory Press; New York.
Savic, B. 1992. Evaluation of PCR, tuberculosis acid analysis and direct microscopy for the detection of Mycobacterium. J Infect Dis 166: 1177 – 1180.
Shankar, P.; Manjunath, K.K. 1991. Rapid diagnosis of tuberculosis meningitis by PCR. Lancet 337: 5 – 7.
Sreevatsan, S.; Bookout, J.; Ringpis, F.; Perumaalla, V.; Ficht, T.; Adams, G.; Haguis, S.; Bricker, B.; Kumar, G.; Rajasekhar, M.; Isloor, S. 2000. A Multiplex Approach to Molecular Detection of Brucella abortus and/or Mycobacterium bovis Infection in Cattle. J. Clin Microbiol 38: 2602 – 2610.
Sreevatsan, S.; Pan, K.; Stockbauer, N.; Connel, B.; Krieswirth, T.; Whittam, S.; Musser, J. 1997. Restricted structural gene polymorphism in the Mycobacterium tuberculosis complex indicates evolutionarily recent global dissemination. Proc. Natl. Acad. Sci. 94: 9869 – 9874.
Thoen, C.; Barletta. 2006. Phatogenesis of Mycobacterium bovis. In; Mycobacterium bovis infection in animals and human. Thoen C., Steell J., Gilsdorf M. (Eds). Second edition) USA: Wiley - Blackwell.
Thoen, C.; Lobue, P.; De Kantor, I. 2010. Why has zoonotic tuberculosis not received much attention?. Int J Tuberc Lung Dis 14: 1073 – 1074.
Wards, B.; Collins De Lisle, G. 1995. Detection of Mycobacterium bovis in tissues by polymerase chain reaction. Vet. Microbiol 43: 227 – 240.
Wood, P.; Ripper, J.; Radford, A.; Bundesen, P.; Rylatt, D.; Cottis L.; John, M.; Plackett, P. 1988. Production and characterization of monoclonal antibodies to Mycobacterium bovis. J Gen Microbiol 134: 2599 – 2604.
Received: 22/01/13
Accepted: 22/03/13
Corresponding author: E-mail: telarieles@hotmail.com (A. Escobar)
Downloads
Publicado
Como Citar
Edição
Seção
Licença
Los autores que publican en esta revista aceptan los siguientes términos:
a. Los autores conservan los derechos de autor y conceden a la revista el derecho publicación, simultáneamente licenciada bajo una licencia de Creative Commons que permite a otros compartir el trabajo, pero citando la publicación inicial en esta revista.
b. Los autores pueden celebrar acuerdos contractuales adicionales separados para la distribución no exclusiva de la versión publicada de la obra de la revista (por ejemplo, publicarla en un repositorio institucional o publicarla en un libro), pero citando la publicación inicial en esta revista.
c. Se permite y anima a los autores a publicar su trabajo en línea (por ejemplo, en repositorios institucionales o en su sitio web) antes y durante el proceso de presentación, ya que puede conducir a intercambios productivos, así como una mayor citación del trabajo publicado (ver efecto del acceso abierto).