Hongos fitopatógenos foliares asociados al cultivo de Prunus persica L.: Identificación morfológica y molecular, y control biológico con Trichoderma asperelloides

Ángel Ceballos-Chávez; Fernando Valenzuela Escoboza; Quintín Ayala Armenta; Everardo López Bautista; Héctor Márquez Lujan; Blanca López-Valenzuela

doi:10.17268/sci.agropecu.2025.013

Autores/as

Ángel Ceballos-Chávez Universidad Autónoma de Sinaloa, Facultad de Agricultura del Valle del Fuerte, Sinaloa, México. https://orcid.org/0000-0002-8332-0389
Fernando Valenzuela Escoboza Universidad Autónoma de Sinaloa, Facultad de Agricultura del Valle del Fuerte, Sinaloa, México. https://orcid.org/0000-0001-6203-1695
Quintín Ayala Armenta Universidad Autónoma de Sinaloa, Facultad de Agricultura del Valle del Fuerte, Sinaloa, México. https://orcid.org/0000-0002-8083-4261
Everardo López Bautista Universidad Autónoma de Sinaloa, Facultad de Agricultura del Valle del Fuerte, Sinaloa, México. https://orcid.org/0000-0003-0111-3683
Héctor Márquez Lujan Universidad Tecnológica de la Babícora, Departamento de Agricultura Sustentable y Protegida, Chihuahua, México. https://orcid.org/0009-0000-8358-4715
Blanca López-Valenzuela Universidad Autónoma de Sinaloa, Facultad de Agricultura del Valle del Fuerte, Sinaloa, México. https://orcid.org/0000-0001-6383-6145

DOI:

https://doi.org/10.17268/sci.agropecu.2025.013

Palabras clave:

Análisis molecular, biocontrol, confrontación en planta, hongo, identificación, T. asperelloides

Resumen

La presencia de hongos fitopatógenos foliares ocasiona severos daños en hojas y frutos de durazno (Prunus persica L.), en zonas productoras del sur de Chihuahua, México, lo que ha ocasionado una disminución en su producción en un 30%. El objetivo de este trabajo fue identificar morfológica y molecularmente los hongos fitopatógenos foliares asociados al cultivo del duraznero evaluando la patogenicidad en plantas de un año contra Trichoderma asperelloides. Se recolectaron hojas con lesiones color café y marrón en frutos momificados en planta de 19 huertos comerciales de durazno distribuidos en tres municipios de producción regional y nacional en el Estado de Chihuahua México. La identificación de hongos de cuatro aislamientos representativos se realizó utilizando métodos morfológicos. caracterización y análisis filogenético basado en la región espaciadora transcrita interna (ITS1 e ITS4) de ADN ribosomal, parte del factor de elongación de traducción 1-alfa (TEF) un segundo cebador secundario por cada uno de los géneros para, Collectotrichum ACT-512F y ACT-583R, Fusarium con EF1. Para las confrontaciones en planta se inoculo una concentración de 1x10⁶ conidios. mL^-1 de patógenos como de T. asperelloides, evaluando el diámetro y longitud de hoja, altura, severidad e incidencia. Se logró identificar la presencia de Fusarium sambucinum, Collectotrichum gleosporoides y Monilinia frutícola, además la cepa B-F-M1-A2-ACCH-3 de F. Sambucinum obtuvo los valores más altos en la inhibición de las variables de respuesta y en severidad Monilinia frutícola presentó 61,23% como el valor más alto. Se recomienda usar la cepa 3 como control biológico de fitopatógenos foliares.

Citas

Agu, K. C., & Chidozie, C. P. (2021). An improved slide culture technique for the microscopic identification of fungal species. International Journal of Trend in Scientific Research and Development, 6(1), 243-254.

Almaraz-Sánchez, A., Ayala-Escobar, V., Tlatilpa-Santamaría, I. F., & Nieto-Angel, D. (2018). Fusarium sambucinum Fuckel agente causal de la pudrición de frutos de chile manzano (Capsicum pubescens) en México. Revista Mexicana de Fitopatología, 37(1). https://doi.org/10.18781/r.mex.fit.1810-2

Arafat, K. H., Hassan, M., & Hussein, E. A. (2021). Detection, disease severity and chlorophyll prediction of date palm leaf spot fungal diseases. New Valley Journal of Agricultural Science, 1(2), 98-110.

https://doi.org/10.21608/nvjas.2022.110022.1027

Baltazar, E., Rodrigues, S., Ares, A., Camelo, A., Brandão, I., et al. (2023). Morphological, Molecular and Genomic Identification and Characterisation of Monilinia fructicola in Prunus persica from Portugal. Agronomy, 13(6), 1493. https://doi.org/10.3390/agronomy13061493

Battistini, G., Gazzetti, K., & Collina, M. (2022). A New Approach: Determining cyt b G143A Allele Frequency in Zymoseptoria tritici by Digital Droplet PCR. Biology, 11(2), 240. https://doi.org/10.3390/biology11020240

Boukaew, S., Chumkaew, K., Petlamul, W., Srinuanpan, S., Nooprom, K., & Zhang, Z. (2024). Biocontrol effectiveness of Trichoderma asperelloides SKRU-01 and Trichoderma asperellum NST-009 on postharvest anthracnose in chili pepper. Food Control, 163, 110490. https://doi.org/10.1016/j.foodcont.2024.110490

Da Silva Neto, J. A., De Queiroz Ambrósio, M. M., Araújo, M. B. M., Da Silva, R. M., Pinto, P. S. L., & Holanda, I. S. A. (2022). Morphological, molecular and pathogenic characterization of Colletotrichum gloeosporioides isolated from mango. Revista Caatinga, 35(3), 514-527. https://doi.org/10.1590/1983-21252022v35n302rc

Dini, M., Raseira, M., Scariotto, S., Marchi, P., & Mello-Farias, P. (2021). Research article peach phenological characters: heritability, maternal effect and correlation with brown rot. Genetics and Molecular Research, 20(1). https://doi.org/10.4238/gmr18684

Dong, J., Shi, H., Wu, Y., Yang, L., Zhu, F., & Ji, Z. (2023). Identification and pathogenicity analysis of Fusarium spp. on peach in China. BMC Microbiology, 23, 211. https://doi.org/10.1186/s12866-023-02958-y

Edgar, R. C. (2004). Muscle: multiple sequence alignment with high accuracy and high throughput. Nucleic Acids Research, 32(5), 1792-1797. https://doi.org/10.1093/nar/gkh340

Gerardo-Lugo, S. S., Tovar-Pedraza, J. M., Maharachchikumbura, S. S., Apodaca-Sánchez, M. A., Correia, K. C., et al. (2020). Characterization of Neopestalotiopsis species associated with mango grey leaf spot disease in Sinaloa, Mexico. Pathogens, 9(10), 788. https://doi.org/10.3390/pathogens9100788

Gununu, P. R., Munhuweyi, K., Obianom, P. C., & Sivakumar, D. (2019). Assessment of eleven South African peach cultivars for susceptibility to brown rot and blue mould. Scientia Horticulturae, 254, 1-6. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2019.04.067

Grano-Maldonado, M. I., Ramos-Payan, R., Rivera-Chaparro, F., Aguilar-Medina, M., Romero-Quintana, J. G., Rodríguez-Santiago, A., & Nieves-Soto, M. (2021). First Molecular Characterization of Colletotrichum sp. and Fusarium sp. Isolated from Mangrove in Mexico and the Antagonist Effect of Trichoderma harzianum as an Effective Biocontrol Agent. Plant Pathology Journal, 37(5), 465-475. https://doi.org/10.5423/ppj.oa.03.2021.0048

Hall, T. A. (1999). BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT. Nucleic acids symposium series, 41(49), 95-98.

Heflish, A. A., Abdelkhalek, A., Al-Askar, A. A., & Behiry, S. I. (2021). Protective and Curative Effects of Trichoderma asperelloides Ta41 on Tomato Root Rot Caused by Rhizoctonia solani Rs33. Agronomy, 11(6), 1162. https://doi.org/10.3390/agronomy11061162

Huang, R., Sun, W., Wang, L., Li, Q., Huang, S., et al. (2021). Identification and characterization of Colletotrichum species associated with anthracnose disease of banana. Plant Pathology, 70(8), 1827-1837. https://doi.org/10.1111/ppa.13426

Huilotl-Luna, M. L., Gil-Muñoz, A., Hernández-Romero, E., López, P. A., & Martínez-Carrera, D. C. (2024). Manejo de la pudrición café (Monilinia fructicola) del duraznero por productores de la Sierra Nevada de Puebla. Agricultura Sociedad y Desarrollo, 21(4). https://doi.org/10.22231/asyd.v21i4.1679

Iñiguez-Moreno, M., Sandoval-Contreras, T., Ragazzo-Sánchez, J. A., & Calderón-Santoyo, M. (2023). Modelado del crecimiento de hongos fitopatógenos aislados de frutos de aguacate Hass. Acta de Ciencia en Salud, 20(7), 1-5.

Iqbal, S., Abbas, A., Mubeen, I., Sathish, M., Razaq, Z., Mubeen, M., Kamran, M., Haroon, M., Syed, S., Naqvi, S., & Ahmed, M. A. A. (2022). Taxonomy, distribution, epidemiology, disease cycle and management of brown rot disease of peach (Monilinia spp.). Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 50(1), 12630. https://doi.org/10.15835/nbha50112630

Karlsson, I., Edel-Hermann, V., Gautheron, N., Durling, M. B., Kolseth, A. K., et al. (2016). Genus-specific primers for study of Fusarium communities in field samples. Applied and environmental microbiology, 82(2), 491-501. https://doi.org/10.1128/AEM.02748-15

Lanfear, R., Calcott, B., Ho, S. y. W., & Guindon, S. (2012). PartitionFinder: Combined Selection of Partitioning Schemes and Substitution Models for Phylogenetic Analyses. Molecular Biology And Evolution, 29(6), 1695-1701. https://doi.org/10.1093/molbev/mss020

Luo, C., Schnabel, G., Hu, M., & De Cal, A. (2022). Global distribution and management of peach diseases. Phytopathology Research, 4(1). https://doi.org/10.1186/s42483-022-00134-0

Mannai, S., & Boughalleb-M’Hamdi, N. (2022). In vitro and in planta potential effect of some indigenous antagonists against Fusarium and pythiaceous species associated with peach seedlings decline. Egyptian Journal of Biological Pest Control, 32(1). https://doi.org/10.1186/s41938-022-00540-8

Manganaris, G. A., Minas, I., Cirilli, M., Torres, R., Bassi, D., & Costa, G. (2022). Peach for the future: A specialty crop revisited. Scientia Horticulturae, 305, 111390. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2022.111390

Moreno, L. J. P., Prado, D. A. A., & Herrera, S. Y. A. (2018). Hongos fitopatógenos asociados a enfermedades foliares de Cattleya, Miltoniopsis y Oncidium en víveros de fusagasugá (Cundinamarca, Co). Revista de Fitopatología Colombiana, 42(1), 13-16.

Özer, N., Uzun, H. İ., Aktürk, B., Özer, C., Akkurt, M., & Aydın, S. (2021). Resistance assessment of grapevine leaves to downy mildew with sporulation area scoring. European Journal Of Plant Pathology, 160(2), 337-348. https://doi.org/10.1007/s10658-021-02247-2

Ramírez-Cariño, H. F., Guadarrama-Mendoza, P. C., Sánchez-López, V., Cuervo-Parra, J. A., Ramírez-Reyes, T., Dunlap, C. A., & Valadez-Blanco, R. (2020). Biocontrol of Alternaria alternata and Fusarium oxysporum by Trichoderma asperelloides and Bacillus paralicheniformis in tomato plants. Antonie Van Leeuwenhoek, 113(9), 1247-1261. https://doi.org/10.1007/s10482-020-01433-2

Ren, F., Dong, W., & Yan, D. (2019). Organs, cultivars, soil, and fruit properties affect structure of endophytic mycobiota of pinggu peach trees. Microorganisms, 7(9), 322. https://doi.org/10.3390/microorganisms7090322

Rios-Hernández, T. A., Uc-Varguez, A., & Evangelista-Martínez, Z. (2021). Biological control of Fusarium oxysporum causal agent of gladiolus corm rot by streptomycetes. Revista Mexicana de Fitopatología, 39(3). https://doi.org/10.18781/r.mex.fit.2105-3

Silva-Neto, J. A. D., Ambrósio, M. M. D. Q., Araújo, M. B. M., Silva, R., Pinto, P. S. L., & Holanda, I. S. A. (2022). Morphological, molecular and pathogenic characterization of Colletotrichum gloeosporioides isolated from mango. Revista Caatinga, 35, 514-527. https://doi.org/10.1590/1983-21252022v35n302rc

Stamatakis, A. (2006). RAxML-VI-HPC: maximum likelihood-based phylogenetic analyses with thousands of taxa and mixed models. Bioinformatics, 22(21), 2688-2690. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btl446

Statistical Analysis Software. (SAS). (2012). Users’ Guide Statistics Version 9.4. SAS Institute Inc., Cary. https://support.sas.com/software/94/

Tan, Q., Schnabel, G., Chaisiri, C., Yin, L. F., Yin, W. X., & Luo, C. X. (2022). Colletotrichum species associated with peaches in China. Journal of Fungi, 8(3), 313. https://doi.org/10.3390/jof8030313

Udhayakumar, R., Usharani, S., & Muthukumar, A. (2019). Pathogenicity variation, morphological and cultural characteristic of Colletotrichum gloeosporioides isolates. Plant Archives, 19(1), 425-430.

Voglmayr, H, Akulov, O. Y., & Jaklitsch, W. M. (2016). Reassessment of Allantonectria, phylogenetic position of Thyronectroidea, and Thyronectria caraganae sp. nov. Mycological Progress, 15(9), 921–937. https://doi.org/10.1007/s11557-016-1218-4

Wang, Q., Fan, K., Li, D., Han, C., Qu, Y., Qi, Y., & Wu, X. (2020). Identification, Virulence and Fungicide Sensitivity of Colletotrichum gloeosporioides s.s. Responsible for Walnut Anthracnose Disease in China. Plant Disease, 104(5), 1358-1368. https://doi.org/10.1094/pdis-12-19-2569-re

White, T., Bruns, T., Lee, S., & Taylor, J. (1990). Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. En Elsevier eBooks (pp. 315-322). https://doi.org/10.1016/b978-0-12-372180-8.50042-1

Yikilmazsoy, G., & Tosun, N. (2021). Characterization of Fusarium sambucinum isolates associated with potato dry rot and evaluation of cultivar susceptibility and fungicides. Turkish Journal of Agriculture and Forestry, 45(2), 222-233. https://doi.org/10.3906/tar-2006-100

Yin, L., Zhang, S., Du, J., Wang, X., Xu, W., & Luo, C. (2021). Monilinia fructicola on loquat: An old pathogen invading a new host. Journal Of Integrative Agriculture, 20(7), 2009-2014. https://doi.org/10.1016/s2095-3119(20)63375-5

Yin, L. F., Mo, W., Guo, D. Y., & Luo, C. X. (2020). First Report of Brown Rot of Prunus mume Caused by Monilinia fructicola in China. Plant Disease, 104(4), 1253. https://doi.org/10.1094/pdis-09-19-1847-pdn

Zhan, Q., Wang, N., Jin, S., Tan, R., Jiang, Q., & Wang, Y. (2018) ProbPFP: A multiple sequence alignment algorithm combining partition function and hidden markov model with particle swarm optimization. IEEE International conference on bioinformatics and biomedicine (BIBM) 1290-1295. https://doi.org/10.1109/BIBM.2018.8621220