Aislamiento e identificación de bacterias acido-lácticas del tracto digestivo de camarones silvestres con potencial probióticos para uso en acuicultura

Authors

  • Ronald García Camizán Escuela de Postgrado, Universidad Nacional de Trujillo, Av. Juan Pablo II s/n - Ciudad Universitaria, Trujillo, Perú. https://orcid.org/0000-0002-2717-2860
  • David Edilberto Saldarriaga Yacila Facultad de Ingeniería Pesquera y Ciencias del Mar, Universidad Nacional de Tumbes, av. Universitaria s/n Pampa Grande, Tumbes, Perú. https://orcid.org/0000-0002-4919-8607
  • Uriel Rodriguez Estrada Facultad de Biología, Universidad Juarez Autonoma de Tabasco, Villahermosa, Tabasco México. https://orcid.org/0000-0003-2859-5205
  • Heber Max Robles Castillo Facultad de Ciencias Biológicas, Escuela de Microbiología y Parasitología, Universidad Nacional de Trujillo, Av. Juan Pablo II s/n - Ciudad Universitaria, Trujillo, Perú. https://orcid.org/0009-0009-1188-2209

Keywords:

bacterias ácido-lácticas, microbiota intestinal, probióticos acuícolas, Penaeus vannamei

Abstract

Las bacterias ácido-lácticas (BAL) son microorganismos de interés en acuicultura por su capacidad para modular la microbiota intestinal y mejorar la resistencia frente a patógenos. Este estudio tuvo como objetivo aislar e identificar BAL del tracto digestivo de camarones silvestres (Penaeus vannamei y Penaeus stylirostris) recolectados en Puerto Pizarro (Tumbes, Perú), evaluando su potencial probiótico preliminar. Se emplearon medios selectivos MRS y TSA, tinción de Gram y amplificación del gen 16S rRNA mediante PCR. Se obtuvieron 23 aislamientos, predominando bacilos (56.25%), seguidos de cocobacilos (30.43%) y cocos (13.04%), con mayoría de reacción Gram positiva. El 100% de los bacilos amplificó el gen 16S rRNA. La identificación molecular evidenció afinidad con Lactobacillus plantarum y otros taxones con potencial aplicación probiótica. Los resultados sugieren que el tracto digestivo de camarones silvestres constituye una fuente promisoria de BAL aplicables en estrategias sostenibles de producción acuícola.

DOI: http://dx.doi.org/10.17268/rebiol.2025.45.02.07

References

Akhter, N., Wu, B., Memon, A. M., & Mohsin, M. (2015). Probiotics and prebiotics associated with aquaculture: A review. Fish & Shellfish Immunology, 45(2), 733–741. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2015.05.038

Bidhan, D., Meena, D. K., Behera, B. K., Das, P., Mohapatra, P. K. D., & Sharma, A. P. (2014). Probiotics in fish and shellfish culture: Immunomodulatory and ecophysiological responses. Fish Physiology and Biochemistry, 40(3), 921–971. https://doi.org/10.1007/s10695-013-9897-0

Carvalho, R. (2009). Fatos e figuras: Aqüicultura e consumo de carnes no Brasil e no mundo. Panorama da Aquicultura.

Castañeda, A., Aguilar, J., Zatan, A., Toledo, O., Feria, M., & Castillo, D. (2018). Identificación molecular de bacterias ácido lácticas con propiedades probióticas aisladas del intestino posterior de tilapia del Nilo (Oreochromis niloticus). Revista de Investigaciones Altoandinas, 20(4), 429–438. https://doi.org/10.18271/ria.2018.420

Chiou, J. Y., & Ogino, C. (1975). Digestibility of starch in carp. Bulletin of the Japanese Society of Scientific Fisheries, 41, 465–466. https://doi.org/10.2331/suisan.41.465

Decamp, O., Moriarty, D. J. W., & Lavens, P. (2006). Probiotics for shrimp larviculture: Review of field data from Asia and Latin America. Aquaculture Research.

Dawood, M. A. O., Amer, A. A., Elbialy, Z. I., & Gouda, A. H. (2020). Effect of including triticale on growth performance, digestive enzyme activity, and growth-related genes of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture, 528, 735568. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2020.735568

Espinoza, I., & Sorroza, L. (2017). Uso y aplicación de probióticos en el cultivo de camarón y sus mecanismos en acción [Trabajo académico]. Universidad Técnica de Machala. http://repositorio.utmachala.edu.ec/handle/48000/10511

García, R. (2019). Efecto de la aplicación de un probiótico en el crecimiento, supervivencia y estado sanitario de Litopenaeus vannamei en etapa de precría [Tesis de maestría, Universidad Nacional de Tumbes].

García, R. (2020). Efecto del probiótico en el cultivo de Litopenaeus vannamei en etapa de precría. Actas del Congreso Internacional de Investigación Científica. Universidad Nacional de Tumbes.

Gisbert, M., Castillo, M., Skalli, A., Andree, K., & Badiola, I. (2013). Bacillus cereus var. toyoi promotes growth and affects the histological organization and microbiota of the intestinal mucosa in rainbow trout fingerlings. Journal of Animal Science, 91, 5279–5288.

Goswami, R., Shrivastav, A. K., Sharma, J. G., Tocher, D. R., & Chakrabarti, R. (2020). Growth and digestive enzyme activities of rohu (Labeo rohita) fed diets containing macrophytes and almond oil cake. Animal Feed Science and Technology, 263, 114456. https://doi.org/10.1016/j.anifeedsci.2020.114456

Hai, N. V. (2015). The use of probiotics in aquaculture. Journal of Applied Microbiology, 119(4), 917–935. https://doi.org/10.1111/jam.12886

Lazado, C. C., & Caipang, C. M. A. (2014). Mucosal immunity and probiotics in fish. Fish & Shellfish Immunology, 39(1), 78–89. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2014.04.015

Lazado, C. C., Caipang, C. M. A., Brinchmann, M. F., & Kiron, V. (2011). In vitro adherence of two candidate probiotics from Atlantic cod and their interference with the adhesion of two pathogenic bacteria. Veterinary Microbiology, 148(2–4), 252–259. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2010.08.024

López, E., Aguirre, G., & Vázquez, M. (2013). Probióticos, una herramienta en la producción pecuaria y acuícola. Scientia Agropecuaria.

Maio, S., Han, B., Zhao, C., Hu, J., Zhu, J., Zhang, X., & Sun, L. (2019). Effects of dietary Pediococcus acidilactici GY2 single or combined with Saccharomyces cerevisiae or β-glucan on the growth, innate immune response, and disease resistance of Macrobrachium rosenbergii. Fish & Shellfish Immunology, 98, 68–76. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2019.12.038

Mohapatra, S., Chakraborty, T., Prusty, A. K., Pani Prasad, K., & Mohanta, K. N. (2014). Beneficial effects of dietary probiotics mixture on hemato-immunology and cell apoptosis of Labeo rohita fingerlings reared at higher water temperatures. PLOS ONE, 9(6), e100929. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0100929

Pirarat, N., Pinpimai, K., Endo, M., Katagiri, T., Ponpornpisit, A., Chansue, N., & Maita, M. (2011). Modulation of intestinal morphology and immunity in Nile tilapia (Oreochromis niloticus) by Lactobacillus rhamnosus GG. Research in Veterinary Science, 91(3), e92–e97. https://doi.org/10.1016/j.rvsc.2011.02.014

Reda, R. M., Selim, K. M., El-Sayed, H. M., & El-Hady, M. A. (2017). In vitro selection and identification of potential probiotics isolated from the gastrointestinal tract of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Probiotics and Antimicrobial Proteins. https://doi.org/10.1007/s12602-017-9314-6

Sihag, R. C., & Sharma, P. (2012). Probiotics: The new ecofriendly alternative measures of disease control for sustainable aquaculture. Journal of Fisheries and Aquatic Science, 7(2), 72–103. https://doi.org/10.3923/jfas.2012.72.103

Smith, R. R. (1971). A method for measuring digestibility and metabolizable energy of fish feeds. The Progressive Fish-Culturist, 33, 132–134. https://doi.org/10.1577/1548-8640(1971)33<132:AMFMDA>2.0.CO;2

Zorriehzahra, M. J., Delshad, S. T., Adel, M., Tiwari, R., Karthik, K., Dhama, K., & Lazado, C. C. (2017). Probiotics as beneficial microbes in aquaculture: An update on their multiple modes of action. Veterinary Quarterly, 36(4), 228–241. https://doi.org/10.1080/01652176.2016.1172132.

Published

2026-03-02

How to Cite

García Camizán, R., Saldarriaga Yacila, D. E., Rodriguez Estrada, U., & Robles Castillo, H. M. (2026). Aislamiento e identificación de bacterias acido-lácticas del tracto digestivo de camarones silvestres con potencial probióticos para uso en acuicultura. REBIOL, 45(2), 37 - 43. Retrieved from https://revistas.unitru.edu.pe/index.php/facccbiol/article/view/7324