Eficiencia en la nodulación por rizobios nativos, procedentes de nódulos de Pisum sativum "arveja" colectados de diferentes Departamentos del Perú

Zoila E. Moreno-Chirinos, Renzo A. Valdez-Núñez, Bertha S. Soriano-Bernilla, Nelson A. Ruesta-Campoverde

Resumen


En la presente investigación se logró autenticar la capacidad nodulativa y evaluar la frecuencia de la eficiencia en la nodulación de 50 cultivos aislados de nódulos radiculares de arveja, colectados de los Departamentos: La Libertad, Lambayeque, Cajamarca y Lima. Para lo cual se inoculó 1mL de suspensión del cultivo aislado (1,2x109 cel / mL) en plántulas de Pisum sativum var. Selección Junín, manteniéndolas bajo condiciones de humedad relativa, 50–70% y temperatura/fotoperiodo, 28 °C - 24 °C / 14 h – 10 h (luz-oscuridad). A los 25 días post-inoculación se obtuvo que el 40% nodularon a la planta huésped. Para determinar la frecuencia en la eficiencia de nodulación, se tuvo en cuenta los parámetros de velocidad de nodulación (DN en mm) y el porcentaje de raíces noduladas (PRN%); el análisis Correlacional de Pearson al 5% de significancia, el MANOVA y el estadístico DHS de Tukey, permitieron establecer los rangos (alta, intermedia y baja) para DN y PRN% por cada cultivo, resultando que solo el 10% de los cultivos evaluados (Ra 218-01 y Ra 212-01) presentaron alta eficiencia en la nodulación, ya que obtuvieron alta DN y alto PRN%.

Palabras clave


Rhizobium, Pisum sativum, autenticación, eficiencia en la nodulación

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Referencias


Abad, J. 2008. Generación de una mutateca en Rhizobium leguminosarum para el análisis de proteínas de exportación Tat-dependientes. Departamento de Biotecnología. Escuela Técnica superior de Ingenieros Agrónomos. Universidad Politécnica de Madrid. 63 pp.

Bernal, G.; Tlusty, B.; Estevez de Jensen, C.; Van Berkum, P.; Graham, P. 2004. Characteristics of rhizobia nodulating beans in the central region of Minnesota. Can.J. Microbiol. 50: 1023–1031.

Caldwell, B.E. 1969. Initial competition of root nodule bacteria on soybeans in a field environment. Agron. J. 61: 813-815.

CIAT (Centro Internacional de Agricultura Tropical). 1988. Simbiosis Leguminosa-Rizobio. Manual de Métodos de Evaluación, Selección y Manejo Agronómico. Cali. 178 pp.

Dazzo, F. 1980. Determinants of host specificity in the Rhizobium-clover symbiosis: 165-188. In: Nitrogen Fixation. Symbiotic Association and Cyanobacteria. N. Newton y W. Orane-Johnson (eds.). Ed. University Park Press. Baltimore.

Fernandes, M.; Fernandes, R.; Hungria, M. 2003. Seleção de Rizobios nativos para guandu, caupí e feijão-de-porco nos tabuleiros costeiros de Sergipe. Pesq. agropec. bras. 38(7): 835-842.

McDermott, T.R.; Graham, P.H. 1990. Competitive ability and efficiency in nodule formation of strains of Bradyrhizobium japonicum. Appl. Environ. Microbiol. 56: 3035–3039.

Marcano, L.; Gonzáles, M.; Leal, A.; V. Michelena. 2001. Fijación biológica de nitrógeno por Pachecoa venezuelensis en dos suelos de Sabana del Oriente Venezolano. Revista UDO Agrícola 1(1): 64-69.

Norris, D. 1968. Techniques used in work with Rhizobium. Common. Bur. Past.Fld.Crop. 47: 186-198.

Prevost, D.; Bordeleau, L.; Antoun, H. 1987. Symbiotic effectiveness of indigenous artic rhizobia on a temperate forage legume: Saifon (Onobrychis viciifolia). Plant Soil 104: 63-69.

Pinto, F.G.S.; Hungria, M.; Mercante, F.M. 2007. Polyphasic characterization of Brazilian Rhizobium tropici strains effective in fixing N2 with common bean (Phaseolus vulgaris L.). Soil Biology & Biochemistry 39(8): 1851-1864.

Pueppke, S.G.; Broughton, W.J. 1999. Rhizobium sp. strain NGR234 and R. fredii USDA257 share exceptionally broad, nested host ranges. Mol. Plant-Microbe Interact 12: 293-318.

Somasegaran, P.; H, Hoben. 1994. Handbook for rhizobia: methods in legume-Rhizobium technology. New York: Springer- Verlag. 450 pp.

Thies, J. E.; Singleton, P.W.; Bohlool, B.B. 1991. Influence of the size of indigenous rhizobial popu-lations on establishment and symbiotic performance of introduced rhizobia on field-grow legumes, Appl. Environ. Microbiol. 57: 19.

Thies, J.; Singleton, P.; Bohlool, B. 1992. Environmental effects on competition for nodule occupancy between introduced strains. Can. J. Microbiol 38: 493.

Valladolid, C.A.; Voysest, V.O. 2006. Clases comerciales de leguminosas de grano: Catálogo para orientar la comercialización en los mercados Nacionales e Internacionales. Promenestras Tex. Chiclayo, Perú. 112 pp.

Vanderleyden, J.; Pieternel, R. 1995. The Rhizobium-Plant symbiosis. Microbiol Rev. 59: 124-142.

Young, J.P.W.; Haukka, K. 1996. Diversity and phylogeny of rhizobia. J. Phytol. 133: 87-94.

Zúñiga, D. 2012. Manual de microbiología agrícola: Rhizobium, PGPR, indicadores de Fertilidad e Inocuidad. Universidad Agraria La Molina. Lima –Perú. 112 pp.

Received May 08, 2016.

Accepted June 22, 2016.

* Corresponding author

E-mail: bsoriano@unitru.edu.pe (B.S. Soriano-Bernilla).




DOI: http://dx.doi.org/10.17268/sci.agropecu.2016.03.02

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