2.1 Subproductos sólidos

En la industria de conservas de RHs, los subproductos de pescado generados dependen del tipo de especie, así por ejemplo, en el procesamiento de sardina, caballa y atún, los subproductos corresponden a las cabezas, vísceras, aletas, huesos y carne roja (^{Irianto et al., 2014}). ^{Arvanitoyannis & Kassaveti (2008}) mencionan que de 1000 kg de pescado fresco o congelado como materia prima inicial se genera 15 m³ de residuos líquidos, 100 a 150 kg de huesos y 250 kg de cabezas y vísceras; mientras que, el fileteado de 1000 kg pescado de carne blanca genera de 40 a 50 kg de piel, 210 a 250 kg de cabezas y 240 a 340 kg de huesos, adicionalmente, el fileteado de 1000 kg de pescado de carne oscura genera entre 400 a 450 kg de residuos.

La Figura 2 muestra los subproductos sólidos generados en el procesamiento de congelado de filetes de merluza y los porcentajes que representan según el compendio de biológico tecnológico de las principales especies comerciales del Perú (^{ITP-IMARPE, 1995}).

Figura 1 Procesamiento de subproductos de la pesca y acuicultura en economía circular. 

Figura 2 Subproductos derivados del procesamiento de merluza. 

En la industria de congelado de crustáceos, el ingreso de 1000 g de langostino Penaeus spp. la generación residuos sólidos estuvieron conformados por 350 - 450 g de cabezas más apéndices y 50 - 100 g de caparazones, asimismo, el ingreso de 1000 g de camarón Macrobrachium spp. generaron de 450 - 550 g de cabeza más apéndices y 60 a 70 g de caparazones (^{Islam & Peñarubia, 2021}). En tanto que, la biomasa residual de macroalgas generada en la industria de aditivos alimentarios como la carragenina osciló de 60% a 70% (^{Uju et al., 2015}), mientras que los residuos sólidos generados en la extracción de alginatos fueron alrededor de 50% (^{Moino et al., 2019}).

2.2 Efluentes residuales

El uso de hielo como medio de preservación de los RHs y en las operaciones de lavado y molido en las plantas pesqueras generan efluentes líquidos con alta carga de nutrientes conformados por proteínas, péptidos y aminoácidos (AA) volátiles, sólidos disueltos y una elevada salinidad por efectos del sodio, cloruros y sulfatos atribuidos a la materia prima y el agua de mar utilizada en numerosos procesos, debido a esta composición, los efluentes sufren una descomposición microbiana rápida que conlleva a la eutrofización y daño del ecosistema acuático (^{Ching & Redzwan, 2017}). Uno de estos efluentes es la sanguaza, cuya composición depende del procesamiento de RHs y del tipo de residuo generado, por ejemplo, la sanguaza producida en un terminal pesquero puede contener 6% de proteína, 4% grasa, 90% agua y 13,2% de sólidos (^{Silva et al., 2011}).

Por otro lado, el crecimiento de la acuicultura también implica la generación de efluentes (excreción de organismos acuáticos y alimento no consumido) en los distintos sistemas de cultivo intensivo, que contaminan los cuerpos de agua receptores (^{Khiari et al., 2019}) . Entre los sistemas de cultivo intensivo destacan los sistemas de recirculación de acuicultura (RAS), sistemas de estanques y sistemas de flujo continuo (alimentado con agua del río); en este último sistema, los sedimentos formados en estanques de trucha reportaron un alto contenido de agua y un pH alcalino, adicionalmente, el contenido de óxido fosfórico (P₂O₅₎ fue de 13,88 mg/g, aunque, los contenidos de materia orgánica y carbono orgánico fueron bajos (^{Dróżdż et al., 2020}), en cambio, los efluentes del cultivo de tilapia en RAS reportaron un pH de 6,6; una conductividad eléctrica (CE) de 0,8 dS/m y las concentraciones (mmol/l) de ion dihidrogenofosfato (H₂PO₄ ^-), ion calcio (Ca²⁺), ion magnesio (Mg²⁺), ion potasio (K⁺), ion sulfato (SO₄ ^2-), ion nitrato (NO₃ ^-), ion amonio (NH₄ ⁺) y NO₃ ^- + NH₄ ⁺ fueron de 0,46, 2,08, 0,34, 0,8, 0,9, 6,56, 0,01 y 6,57 mmol/l, respectivamente (^{Álvarez-García et al., 2019}).

3.1 Biodegradación

La biodegradación de los residuos de la industria pesquera, como sustrato y fuente de energía, permite el crecimiento y desarrollo de consorcios microbianos en biorreactores, tanto a pequeña escala (5 l) como a escala piloto (1 m³) (^{Gwon & Kim, 2012}). Además, la transferencia continua de oxígeno de una fase gaseosa a una fase líquida mantiene el metabolismo oxidativo del consorcio microbiano (^{Jung & Kim, 2016}). Una tasa de carbono/nitrógeno (C/N) alta estimula las células para producir metabolitos, en cambio, una tasa C/N baja conduce a la formación e incremento de biomasa, no obstante, mientras existan fluctuaciones de C/N durante el bioproceso, no será posible alcanzar una biodegradación óptima (^{Figueroa et al., 2015};^{Jung & Kim, 2016}).

El producto de la biodegradación (bajo suministro continuo de oxígeno disuelto) de residuos pesqueros, luego de 80 h, es un caldo de cultivo final que contiene AA y distintos microorganismos, este caldo demostró poseer una mejor capacidad de fertilización en comparación a otros fertilizantes comerciales (^{Kang et al., 2018}). Particularmente, finalizada la biodegradación, se realiza una ultrafiltración (separando los sólidos y microorganismos), luego, por medio de una extracción al caldo de cultivo ultrafiltrado, se obtiene materiales biofuncionales y, finalmente, se mezcla el caldo remanente de la extracción con la parte sólida (separada por ultrafiltración), de esta manera, se manufactura un biofertilizante (^{Kim et al., 2017}), posteriormente, la adición de 1% de lactato prolonga la vida en anaquel del FOL por 6 meses (^{Dao & Kim, 2011}).

En efluentes del procesamiento de harina de pescado, el consorcio microbiano se adaptó luego de 6 h de iniciada la reacción, y conforme aumentó la biomasa, la cantidad de proteasas responsables de la biodegradación del sustrato también aumentaron debido a la secreción por parte de los microorganismos, luego de 30 h, el olor indeseable del pescado desapareció (^{Kang et al., 2018}). Mientras que, ^{Figueroa et al. (2015}) indicaron que, durante las primeras 41 h, el pH, oxígeno disuelto, el potencial oxidación-reducción y peso seco del lodo disminuyeron a medida que el número de células del consorcio microbiano incrementó, además de ello, el olor del pescado desapareció; en ese lapso, el contenido inicial de células (6,72x10⁷ ufc/ml) incrementó a 4,39x10⁸ ufc/ml y, finalmente, luego de 80 h, alcanzó 1,73x10⁸ ufc/ml.

El incremento en la concentración de aniones como dióxido de carbono (CO2), ortofosfato (PO43-), sulfato (SO42-) y nitrato (NO3-) implicó que la biodegradación de efluentes de harina de pescado se realizó en condiciones aeróbicas, asimismo, algunos AA producidos llegaron a ser utilizados por microrganismos y convertidos en CO2 y NO3-, de manera que, la concentración de NO3- incrementó conforme avanzó la biodegradación (^{Kang et al., 2018}). En residuos líquidos de caballa, la biodegradación aeróbica produjo diversos metabolitos, los AA en el caldo de cultivo final reportaron actividades antioxidante y antimicrobiana elevadas, pero una actividad antifúngica débil (^{Jung & Kim, 2016}).

Recientemente, ^{Jung & Kim (2020}) lograron la biodegradación, utilizando Bacillus spp., de una mezcla de aguas residuales de la pesquería de caballa y de la macroalga parda Undaria Pinnatifida, de manera que, la actividad de proteasas, alginato liasas y laminarinasas permitieron la producción de un biofertilizante de alta calidad, cuyo grado de hidrólisis, luego de 72 h, fue de 36,4%; el FO reportó una elevada actividad antioxidante, una alta actividad de eliminación de radicales hidroxilos y la presencia de sustancias de bajo peso molecular. Igualmente, ^{Kang et al. (2020}) evaluaron la biodegradación, a escala de 150 l, de 17,5% de residuos altamente salinos de anchoa y macroalgas verdes por acción de Bacillus licheniformis para producir un FOL, el inóculo mostró actividades proteolíticas de 1,016 U/ml, lipolíticas de 5,92 U/ml y celulolíticas de 0,45 U/ml. Finalmente, también se comenzó a estudiar la biodegradación de efluentes del cultivo de tilapia para producir proteínas, péptidos y AA menores a 2 kDa, cuya actividad antimicrobiana (contra Vibrio vulnificus) y antioxidante demostraron ser un potencial ingrediente antimicrobiano y antioxidante natural (^{Mhina et al., 2020}).

3.2 Hidrólisis

La hidrólisis consiste en la división de proteínas hasta cadenas peptídicas de menor tamaño que contienen de 2 a 20 AA, el producto recibe el nombre de hidrolizado (^{Halim et al., 2016}). Los métodos de hidrólisis de RHs pueden realizarse por vía enzimática, química, térmica, ácida, alcalina, microbiana y autólisis. El método convencional, rápido y de bajo costo es la adición de una solución de ácido fórmico o sulfúrico, sin embargo, algunos AA esenciales son destruidos durante la hidrólisis, en cambio, el método enzimático emplea enzimas proteolíticas que fraccionan la proteína, produciendo una fracción soluble y otra insoluble (^{Halim et al., 2016}; ^{Villamil et al., 2017}).

En residuos de crustáceos, los quito-oligosacáridos son productos de la degradación de quitina y quitosano, que pueden ser preparados vía hidrólisis enzimática o química; el hidrolizado obtenido posee actividad antiviral, antimicrobiana y antifúngica en plantas (^{Sahu et al., 2017}b), no obstante, aún no se han desarrollado estudios más detallados en la producción de FOL a partir de la hidrólisis de residuos de crustáceos.

La principal diferencia entre el método enzimático y químico radica en que el primero controla los parámetros temperatura y pH ajustado (depende del tipo de proteasa); la inactivación de la proteasa se realiza incrementando la temperatura (pasteurización) o ajustando el pH. En cambio, la hidrólisis química controla los parámetros temperatura y presión; el proceso culmina suspendiendo el tratamiento térmico y la presión, posteriormente, el hidrolizado es centrifugado, filtrado y secado (^{Villamil et al., 2017}).

La extracción de proteasas provenientes de residuos de Ananas comosus y Carica papaya permite aprovechar la actividad proteolítica de la bromelina y papaína, respectivamente, asimismo, los residuos de A. comosus y la mezcla de ambos residuos mostraron actividades enzimáticas de 0,33 y 0,36 U/ml de enzima, respectivamente; también, el valor óptimo de pH en la extracción fue de 7,5 a 37 °C, de esta forma, la incorporación de residuos de estas frutas garantizaron la hidrólisis enzimática de residuos de pescado, la mejora del contenido de N y el enriquecimiento del FOL (^{Ranasinghe et al., 2021}). En cambio, ^{Norouzi (2013}), empleó una hidrólisis ácida en residuos del procesamiento de harina de pescado, logrando recuperar el 85,97% de proteína para producir un FOL, posteriormente, el uso de procesos de separación basados en membranas lograron purificar y separar la parte líquida, la utilización de hierro y carbón activado de bambú lograron el desodorizado del FO. En Australia, los EM son particularmente producidos por la hidrólisis alcalina de biomasa de D. potatorum y A. nodosum; específicamente, un producto comercial elaborado a partir de D. potatorum reportó un nivel de sólidos solubles de 16% (p/p) (^{Arioli et al., 2015}).

Por otro lado, la acuicultura intensiva también genera gran cantidad de peces muertos por estrés y enfermedades infecciosas (^{Kim et al., 2020}). Bajo este contexto, la hidrólisis alcalina (que implica el uso de un alcali, temperatura y presión altas) es una tecnología nueva empleada en la eliminación de cadáveres de animales, que, llevada a condiciones óptimas consigue la hidrólisis completa de diferentes tejidos de animales infectados , además de la inactivación de Bacillus stearothermophilus, (^{Wang et al., 2016}). Este tipo de hidrólisis ya ha sido empleado en el desarrollo de FOL, reciclando carcasas de animales infectados, y siendo aplicado en el cultivo de pimiento picante, cuyo uso en conjunto a fertilizantes inorgánicos reportó una longitud y peso de la planta mayor que el solo uso de fertilizante inorgánico (^{Kang et al., 2019}), no obstante, aún no se reporta su uso en carcasas de peces muertos por infecciones virales en sistemas de cultivo intensivo.

3.3 Fermentación

La fermentación de RHs se realiza adaptando diferentes procesos, que varían dependiendo de la composición del sustrato, el cultivo iniciador, la fuente de carbohidratos, la temperatura y el tiempo (^{Ahuja et al., 2020}). Los microorganismos usados para la fermentación pueden ser aeróbicos, anaeróbicos o facultativos, incluidos hongos y protozoos (^{Venugopal, 2021}); de manera particular, las bacterias ácido lácticas y levaduras se usan como inóculos en los procesos fermentación de residuos de RRHH, ambos pueden desarrollarse en contenido bajo de oxígeno disuelto, logrando inhibir el crecimiento de bacterias aeróbicas y patógenas sin que ocurra la degradación de los componentes nutricionales del FOL; otra función es la eliminación del olor a pescado, en su lugar, el FOL adquiere un olor característico a malta y melaza (^{Florez-Jalixto et al., 2020}; ^{Lakhal et al., 2017}).

^{Sahu et al. (2017}a) propusieron la integración de los residuos de la industria azucarera (melaza, bagazo, lodo prensado) y la industria pesquera (pescados rechazados en venta, residuos sólidos, conchas de moluscos) para la elaboración de FOL y compost, con el fin de mejorar las propiedades químicas, físicas y microbiológicas de los suelos agrícolas, y también, la productividad de los cultivos agrícolas y estanques acuícolas. De igual forma, ^{Lakhal et al. (2017}) biotransformaron una mezcla ternaria de residuos industriales del procesamiento de sardina y azúcar (68% de residuos de pescado, 13% de melaza, 19% de espuma producida en el proceso de refinado) en FOL, es así que, el uso de 1% Saccharomyces cerevisiae ayudó a la conservación del fósforo (P). En un estudio posterior, ^{Lakhal et al. (2020)} optimizaron una mezcla ternaria compuesta por residuos de pescado, orujo de uva y melaza para elaborar un producto rico con los nutrientes esenciales para un óptimo crecimiento para las plantas.

^{Aranganathan & Radhika Rajasree (2016}) biotransformaron residuos de pescado en FOL, agregando 10% de melaza y Bacillus subtilis. Mientras que ^{An et al. (2016}) utilizaron 20% harina de pescado como sustrato, no obstante, el incremento del sustrato implicó un aumento de la CE; mientras que el uso de levadura seca consiguió promover la mineralización del N y obtuvo una mayor concentración de amonio (NH4-N), cuya concentración en el FOL fue más alta al culminar la fermentación, sin embargo, la inclusión de melaza tuvo un efecto inhibitorio en la mineralización de N. Cabe señalar que, una CE de 1 dS/m (valor inferior al límite de concentración de sal) permite el aumento de la diversidad de bacterias y hongos en el suelo agrícola (^{Jung et al., 2019}), en cambio, una CE alta puede amenazar la supervivencia de microorganismos y reducir la calidad del FOL (^{Lakhal et al., 2017}).

^{Dewi et al. (2019}) evaluaron el efecto de añadir tres iniciadores: bread, tempe y tape, con el fin de mejorar la fermentación de Sargassum sp. para producir un FOL. Mientras que ^{Tsaniya et al. (2021}) aceleraron el proceso de fermentación aeróbica, añadiendo Trichoderma sp. y Azospirillium sp., a una mezcla Gracilaria sp. y Sargassum sp. También, la fermentación puede llevarse a cabo con la adición de melaza y sin inóculo, es decir, por fermentación natural (^{Thendral Hepsibha & Geetha, 2019}). La incubación en condiciones aeróbicas necesita de agitación diaria para acelerar la fermentación, además, puede ser realizado a temperatura ambiente en lugares con clima tropical y subtropical (^{Sahu et al., 2017}a).

^{Tiwow et al. (2019}) utilizaron la fermentación tradicional bakasang, en la cual, residuos de tilapia fueron fermentados con 25 ml de sal 2M (efecto conservante) y 25 ml de jugo de lima (efecto desodorizante) durante 14 días, posteriormente, se adicionó harina de aletas y escamas (secadas al sol) al producto fermentado; la extracción de los nutrientes se realizó agregando 20 ml de ácido nítrico, calentando la muestra a 60 °C por 10 min y finalmente se diluyó 10 ml de muestra en 100 ml. En un siguiente estudio, ^{Tiwow et al. (2020)}, mezclaron el FOL, obtenido por fermentación bakasang, con arcilla para producir un fertilizante sólido.

En el caso de residuos de crustáceos, debido al elevado costo de enzimas quitosanasas y quitinasas, sobre todo a escala industrial, se prefiere emplear la fermentación usando como inóculo enzimas endógenas, levaduras y melaza; su aplicación foliar mejora la fotosíntesis de los cultivos (^{Sahu et al., 2017}b). ^{Peña-García et al. (2020}) fermentaron una mezcla compuesta por 75% de cabezas de langostinos, 25% de melaza y 5% de leche con bacterias ácido lácticas, el FOL se estabilizó luego de 15 días y se usó una tasa de 700 l/ha del lixiviado en el cultivo de pasto, obteniendo buenos resultados.

3.4 Digestión y Compostaje

La digestión aeróbica o compostaje líquido es un bioproceso asistido por bacterias endógenas heterótrofas y nitrificantes, que hacen posible la transformación de residuos sólidos de la acuicultura en FOL; en condiciones alcalinas se observaron pérdidas de N y nutrientes debido a la volatilización del amoniaco y precipitación de iones, respectivamente, pero a pH bajo o temperatura alta ocurrió la inhibición de la nitrificación, además, el nitrato se observó a temperaturas <40 °C (^{Khiari et al., 2019}). Para una digestión anaeróbica, ^{Sastro et al. (2015}) produjeron FOL (en un fermentador de 150 l) con la formulación de 50 kg de residuos de pescado (60% de contenidos estomacales, 20% de cabezas, 10% de pescados dañados y 10% de aletas), 30 l de agua, 20 kg de melaza y 1 l de Lactobacillus spp. con 2x108 células/ml.

La co-digestión es la digestión anaeróbica de dos o más sustratos, así, se complementan los nutrientes (de bajo contenido) de los residuos de pescado, para ello, es necesario evaluar la relación de la mezcla de los residuos que optimizan el proceso y aprovechan la sinergia de la mezcla de sustratos, por ejemplo, en la co-digestión de residuos industriales del procesamiento de pescado y fresa (a escala de laboratorio y bajo condiciones mesofílicas), los residuos de fresa incrementaron la concentración de materia orgánica de la mezcla, además permitieron la dilución de compuestos inhibidores como cloruros, nitrógeno y fósforo (residuos de pescado); por otra parte, el proceso de biometanización también produjo una parte líquida rica en nutrientes denominada digestato, que es recomendado como enmienda orgánica en la agricultura (^{Serrano et al., 2013}). En un estudio posterior, ^{Serrano et al. (2014)} optimizaron la co-digestión de residuos de fresa y pescado, destacando que, la producción de metano más alta se logró con una relación residuos de fresa/residuos de pescado de 94/6, mientras que la tasa de carga orgánica fue más alta empleando una relación de 88/12.

El compostaje de residuos pesqueros es un bioproceso aeróbico o anaeróbico lento, en el cual se puede recuperar entre el 49 a 64% del N residual de carcasas de pescados y mariscos; en este proceso, la liberación de N en el suelo es lenta y continua durante 210 días, garantizando la disponibilidad de N para los cultivos y evita su lixiviación (^{Lopes et al., 2021}). Mientras que, ^{Kim et al. (2020}) diseñaron un equipo móvil que recicló carcasas de pescado infectados con agentes patógenos, así, a partir de 53,824 kg de carcasas se produjo 29,216 kg de compost. Por otro lado, al añadir pasto triturado a los residuos de pescado, el orden de abundancia de elementos en el FO fue: P> Ca> N> Mg> K> Fe> Zn> Mn> Mo> Cu (^{Busato et al., 2017}).

El compostaje representa un método económico para biotransformar las macroalgas que se acumulan en la costa (^{Gibilisco et al., 2020}). Las bacterias mesofílicas y termofílicas se encuentran presentes al inicio y final del compostaje, respectivamente; con el incremento de la temperatura, las bacterias termófilas reemplazan a las mesófilas, además, el compostaje de residuos pesqueros también puede realizarse incluyendo lombrices de tierra (vermicompost), de esta forma, las bacterias efectúan la digestión hasta cierto grado y las lombrices finalizan el proceso de digestión, por lo que ambos se complementan (^{Özyurt & Özkütük, 2019}).

La eficacia del compostaje considera como parámetros: temperatura, pH, humedad, materia orgánica total, N orgánico total, C orgánico total, relación C/N, cenizas e índice de mineralización (^{Nascimento et al., 2018}), usualmente, se recomienda una relación C/N de 25/1 a 35/1 para facilitar la generación de energía (efecto del C) y la construcción de células microbianas (efecto del N) (^{Marsh & Bechtel, 2012}). Así, el compostaje en hileras de residuos de pescado y mariscos, mezclados con sustratos vegetales como virutas de madera y cáscara de maní, lograron la recuperación del N residual (49 a 64%), además el compost producido obtuvo concentraciones de 33g/kg de N, 13,5g/kg de P, 8,4g/kg de K y 22,5g/kg de Ca, que lo hace ideal para ser aplicado como enmienda (^{Lopes et al., 2021}). Recientemente, se ha comenzado a estudiar, profundamente, el compostaje como método para reutilizar los sedimentos de los estanques acuícolas (alto contenido mineral por la arena) y RAS, junto con residuos de paja de trigo y pasto húmedo, adicionalmente, al añadir biocarbón derivado de residuos de cartón y astillas de madera al compost hubo un aumento del contenido de C y N (^{Dróżdż et al., 2020}).

4.1 Péptidos y aminoácidos

Los AA representan una parte esencial de la fracción activa de materia orgánica de un FO (^{Gwon & Kim, 2012}). La abundancia de AA del sobrenadante de un caldo de cultivo biodegradado siguió el orden: lisina, ácido glutámico, metionina y tirosina (al inicio de la biodegradación); luego de 42 h: lisina, ácido glutámico, metionina, leucina, triptófano, fenilalanina y tirosina; y finalmente, luego de 72 h: lisina, ácido glutámico, glutamina y metionina (^{Jung & Kim, 2016}). Mientras que, ^{Figueroa et al. (2015}) reportaron niveles bajos de ácido aspártico, treonina, serina, prolina y arginina, en cambio, los niveles de valina, isoleucina, leucina, tirosina, glutamina, cistina y triptófano fueron más altos que en fertilizantes comerciales, además, el sobrenadante del caldo de cultivo tuvo un nivel de AA totales comparable al nivel promedio de fertilizante comercial y un nivel alto de AA azufrados como cisteína y metionina.

En general, los AA promueven la quelación de metales como Fe, Cu, Zn, Mn (solubilidad de micronutrientes) (^{Saju et al., 2019}). La actividad quelante y complejante, tanto de AA como de péptidos específicos, permite que los nutrientes se encuentren disponibles para que las raíces puedan adquirirlos, específicamente, la prolina (de efecto quelante) posee un mecanismo de defensa contra el estrés oxidativo y osmótico (resultado de varios niveles de sal) (^{Hashem et al., 2019}) , de hecho, la concentración de prolina es más alta en plantas tolerantes al estrés por sequía que en plantas sensibles a este tipo de estrés (^{Goñi et al., 2018}), también, protege a la planta contra los metales pesados, contribuyendo a la adquisición de macronutrientes y su movilidad, además de influir en el crecimiento reproductivo; mientras que, compuestos nitrogenados como la glicina-betaína contribuyen a la eliminación de radicales libres, gracias a su actividad antioxidante (^{du Jardin, 2015}); la arginina controla el desarrollo y crecimiento de patógenos; la glicina, alanina, cisteína pueden incrementar el rendimiento total, por otro lado, la glutamina, asparagina y arginina son fuentes de N para el crecimiento; la cisteína y metionina permiten la superación del daño causado por el frío o insuficiente luz solar (^{Jung & Kim, 2020}); el triptófano (precursor de auxinas) estimula el crecimiento de la raíz, adicionalmente, el triptófano y metionina mejoran la absorción de N (^{Saju et al., 2019}).

La absorción de nutrientes, por efecto de los AA, se basa en mecanismos como el incremento de las comunidades microbianas que promueven la degradación de la materia orgánica y mineralización de nutrientes en el suelo; su absorción ocurre a través de las raíces y hojas por medio de transportadores como el transportador de lisidina histidina 1 (^{Saju et al., 2019}). De esta forma, los AA reponen los niveles de nutrientes del suelo, alimentando organismos como lombrices de tierra, nemátodos y microorganismos, los cuales son esenciales para reestablecer la salud del suelo y plantas (^{Norouzi, 2013}).

^{Bettiol et al. (2014}) indicaron que el uso de hidrolizado de pescado indujo la supresión de F. oxysporum f. sp. Lactucae transmitido por el suelo, de hecho, concentraciones de 10 a 20% de hidrolizado inhibieron la germinación de microconidios entre el 83 - 88%. Además, ^{Visconti et al. (2010}), en un experimento in vitro, determinaron que el uso de una mezcla con hidrolizado de pescado mostró un efecto supresor mayor sobre el patógeno Cylindrocladium spathiphylli, dicho efecto se produjo al emplear concentraciones >20% de hidrolizado.

^{Gerber et al. (2017}) mencionan que incluso después de un bioproceso, los residuos pueden contener una alta concentración de sales, metales pesados y microorganismos patógenos que pueden ocasionar efectos no deseados tanto en plantas como en el suelo, por lo tanto, las pruebas de germinación son bioensayos aplicados en semillas debido a su simplicidad y sensibilidad frente a distintas concentraciones de los diferentes compuestos contaminantes. El principal bioindicador es el índice de germinación (IG), que combina la germinación de las semillas y el crecimiento radicular, como resultado, se obtiene una estimación más completa de la toxicidad (^{Venegas et al., 2018}).

4.2 Extracto de macroalgas

Entre los compuestos químicos de un extracto de macroalgas (EM) destacan polisacáridos, polifenoles, florotaninos, pigmentos vegetales, ácidos grasos insaturados, esteroles, AA, osmoprotectores, compuestos antimicrobianos y hormonas vegetales (^{Battacharyya et al., 2015}; ^{Górka et al., 2018}; ^{Nabti et al., 2017}). La cantidad de compuestos activos dependen de factores como la especie, lugar de la cosecha, temporada, condiciones ambientales y el método de extracción, adicionalmente, las especies de macroalgas más utilizadas en la fabricación de BEs son: Laminaria spp., Sargassum spp., Turbinaria spp. y Fucus spp. (^{Górka et al., 2018}).

^{Hashem et al. (2019}) reportaron que el contenido fitoquímico de la macroalga Ulva Lactuca Linnaeus (peso fresco) constó de 292,05 μg/g de carbohidratos totales, 9,07 μg/g de fenoles totales, 127,53 μmol/g de glicerol, 5,01 μg/g de prolina; mientras que el contenido de fitohormonas (en base seca) constó de 14,16 μg/g de ácido indolacético, 3,52 μg/g de ácido indolbutírico, 66,37 μg/g de ácido giberélico. Mientras que, los compuestos presentes en el EM de Kappaphycus alvarezii estuvo conformado por 3% de NPK, 0,9% de Ca + Mg + Zn, 1,88% de AA + ácido fúlvico + ácido húmico y 0,5% de citoquininas + ácido algínico + manitol + giberelinas (^{Rani Juneius et al., 2018}).

En general, los EM promueven la división del cloroplasto y aumentan las concentraciones de Mg, Na, Mn y Cu en las plantas, además de la translocación (de la raíz al brote) del Fe y Zn (^{Billard et al., 2014}). El suministro de EM al suelo proporciona materia orgánica, AA, oligoelementos, minerales, reguladores de crecimiento, vitaminas y metabolitos; funcionando como acondicionador de suelo (^{Silva et al., 2019}). Los fenoles desempeñan una función vital en el crecimiento y desarrollo de plantas como mecanismos de defensa, además de contrarrestar el estrés oxidativo (^{Hashem et al., 2019}). Otras propiedades de EM a destacar son: el efecto estimulante en la germinación de semillas, la mejora de la salud de las plantas, el alargamiento de los brotes y raíces, la resistencia a los organismos fitopatógenos y la mejora en la absorción de nutrientes y agua (^{Nabti et al., 2017}), mientras que, como propiedades indirectas destacan la mejora de la hidratación y estructura del suelo, además de aumentar el número de microorganismos en el suelo (^{Battacharyya et al., 2015}).

Las formulaciones agrícolas que incluyen EM, a bajas concentraciones, pueden ser enriquecidos con urea, ácidos húmicos, sulfato de potasio y fosfato de amonio, estos compuestos influyen en los procesos de crecimiento y desarrollo de plantas, también influyen indirectamente en la fertilidad del suelo y la presencia de microorganismos (^{Górka et al., 2018}) . Incluso, a partir del compostaje de macroalgas se puede obtener un extracto líquido (por filtración) que puede ser aplicado como BEs, este extracto, libre de fitotoxicidad, presenta un color marrón intenso (^{Michalak et al., 2017}).

4.3 Microorganismos de compañía

Los biofertilizantes son fertilizantes que contienen microorganismos vivos, cuyo rol es incrementar la actividad microbiológica del suelo, esto los convierte en un componente crucial para la fijación biológica del N (^{Bhattacharjee & Dey, 2014}). Cabe destacar que, ^{du Jardin (2015}) propuso a los biofertilizantes como una subcategoría de BEs. Entre los microorganismos que componen un biofertilizante se encuentran: las bacterias fijadoras de N, las bacterias solubilizadoras de K y P, rizobacterias, cianobacterias, hongos endo y ecto micorrícicos (^{Ju et al., 2018}).

Los inóculos comunes en biofertilizantes son hongos micorrízicos, Rhizobium sp., Azospirillum, Azotobacter, Bacillus, Pseudomonas, Glomus sp., Yarrowia lipolytica, etc (^{Kumar & Dubey, 2020}). De hecho, el Azospirillium sp. es uno de los microorganismos aeróbicos que pueden aumentar el nivel de N y asociarse con las plantas, también puede descomponer el N en macroalgas, mientras que la Trichoderma sp. permite la descomposición de la materia orgánica y el control de enfermedades en plantas (^{Tsaniya et al., 2021}). En estudios in vitro de Azotobacter spp., se cuantificó 2,25 a 60,75 ppm de ácido indolacético, 10,37 a 36,03 ppm de N fijado como amonio y 1,72 a 6,06 ppm de fósforo solubilizado (^{León & Rojas, 2015}).

La inclusión de Pseudomonas fluorescens estimuló el crecimiento de las plantas e inhibió el crecimiento de microorganismos patógenos, por ejemplo, su inoculación en un medio compuesto por un extracto de Sargassum mezclado con ensilado de pescado y melaza permitió obtener, luego de 10 días de inoculación, un FO con un recuento de 10,6 log ufc/ml, pH de 3,76, viscosidad de 2,95 cPs, 0,62% de N total y CE de 9,18 μS/cm (^{Basmal et al., 2019}). De igual forma, al añadir Trichoderma sp. en formulaciones de FO a base de Sargassum sp. se alcanzó la mayor densidad de Trichoderma sp. (46,5x10⁶ ufc/ml) luego de 7 días (^{Kusumawati et al., 2021}).

El uso de hidrolizado de residuos de Laminaria japónica permitió el cultivo de las cepas de Bacillus subtilis y Burkholderia pyrrocinia, las cuales alcanzaron valores >10⁷ ufc/ml, mientras que, en la cepa de Bacillus amyloliquefaciens fue <10⁷ ufc/ml, además, las tres cepas fueron capaces de sintetizar la fitohormona ácido indol-3-acético (^{Yuan et al., 2021}). Según los estándares establecidos para biofertilizantes, el número de células presentes en este tipo de FO debe ser mayor a 1x10⁶ ufc/ml; adicionalmente, los Bacillus sp, presentes en los biofertilizantes de residuos pesqueros, pudieron sintetizar enzimas hidrolizantes, reflejado en altos valores de grado de hidrólisis (^{Jung & Kim, 2020}).

Respecto a la disponibilidad de rizobacterias como control biológico, el B. subtilis ha demostrado poseer un efecto inhibidor en el desarrollo micelial de conidios en Fusarium. oxysporum f. sp. Lycopersici (^{Guato-Molina et al., 2019}). Por otro lado, ^{Ward et al. (2018}) evaluaron la producción de amonio y amoniaco por parte de microorganismos como Clostridium aminophilum (más eficaz), Peptostreptococcus anaerobius y Clostridium sticklandii, los cuales se encargaron de fermentar AA en sustratos ricos en N orgánico como hidrolizado de pescado en polvo (solo y/o con adición de levadura).

5.1 Fertirrigación

El incremento del uso de la tecnología de riego por goteo (RPG) ha ido acompañado de la demanda e interés de FOL, los cuales son inyectados en la fertiirrigación. Este sistema utiliza un inyector de fertilizante con una bomba que es impulsada con agua (^{Hartz et al., 2010}). Por lo tanto, los programas de fertiirrigación deben ser complementados con el uso de BEs con el fin de minimizar y contrarrestar el estrés al que los cultivos se encuentran expuestos, como los cambios de temperatura, sequía, heladas, plagas y enfermedades (^{García-Gaytán et al., 2018}).

Las ventajas de la fertiirrigación de RPG, frente a otros métodos como el riego de canal abierto o con aspersores, son: (1) reducción significativa de la lixiviación de N orgánico e inorgánico disuelto en la zona radicular, (2) incremento de la eficiencia del uso de fertilizantes, (3) retraso en la incidencia de plagas y enfermedades y (4) evitar la escorrentía (^{Kafkafi & Kant, 2005}). ^{Fernandez-Salvador et al. (2015}) utilizaron hidrolizado de pescado en programas de fertiirrigación a través de un sistema de RPG; cuya dosificación fue a una tasa de 56 kg/ha de N por año (en los 2 primeros años) y 90 kg/ha en el tercer año. En el cultivo de fresa (Fragaria x ananassa), luego de la preparación original del campo y del transcurso de los meses, la inyección de un FOL de residuos de pescado y guano obtuvieron resultados efectivos, cubriendo la alta demanda de N de la fresa, sin embargo, se debe controlar y minimizar su uso debido a complicaciones en el mantenimiento de sistema de RPG (filtración de partículas grandes) (^{Hartz et al., 2010}).

La aplicación de 7 ml/l de extracto de A. nodosum por aspersión (en intervalos de 6 días) en Paspalum vaginatum, durante 6 semanas en condiciones de invernadero, mostró un mayor rendimiento en plantas tratadas durante intervalos de riego prolongados así como en condiciones salinas (1 y 49,7 dS/m), logrando mitigar los efectos de salinidad y de sequía, además de mejorar el rendimiento del césped al aumentar la tasa de fotosíntesis, la longitud de las raíces y el peso seco e inhibición de la peroxidación lipídica (sistema de defensa antioxidante) (^{Elansary et al., 2017}). Mientras que, la irrigación por inmersión de un tratamiento de hidrolizado de pescado en el cultivo de tomate uva reportó valores mayores respecto a un tratamiento convencional en el peso seco de hojas, biomasa total de la planta, número de frutos y rendimiento total en un 35%, 9%, 21% y 4%, respectivamente (^{García-Santiago et al., 2021}).

^{Castro et al. (2006}) evaluaron y compararon el uso de efluentes de un estanque acuícola (como agua de riego) con agua de pozo (control) en un sistema de RPG en plantas de tomate variedad Cherry, concluyendo que el efluente acuícola aumentó la productividad del cultivo en comparación al control, el incremento de la productividad fue atribuido al aumento del número de frutos, por lo que este efluente no solo puede complementar, sino también sustituir fertilizantes orgánicos. ^{Álvarez-García et al. (2019}) recolectaron y limpiaron (mediante un filtro mecánico) los efluentes del sistema de recirculación cerrado de un cultivo intensivo de tilapia para ser utilizado en la fertirrigación de Pelargonium zonale. Por su parte, ^{Kaab Omeir et al. (2019}) demostraron que el riego con efluentes de piscifactorías aumentó de manera significativa el peso de los brotes y de la raíz, la altura del tallo y el número de hojas de las especies albahaca y verdolaga, destacando que el riego con este efluente (comparándolo con agua de río como control) incrementó el peso fresco de los brotes de albahaca y verdolaga en 203% y 250%, respectivamente.

5.2 Horticultura

Las investigaciones en horticultura, específicamente frutas y verduras orgánicas, están enfocadas a estudios de suministro de nutrientes, protección de plantas y sistemas de cultivo, tanto la horticultura orgánica como la convencional ponen énfasis a la tolerancia a las enfermedades y plagas (Dorais & Alsanius, 2015). En el caso de cultivos a largo plazo en invernaderos, como tomates por ejemplo, se debe considerar el requerimiento de nutrientes orgánicos líquidos para complementar los nutrientes incorporados a la planta, del mismo modo, los cultivos ornamentales también requieren de FOL, sin importar la duración del ciclo de producción (^{Burnett et al., 2016}).

^{An et al. (2017}) determinaron que no existieron diferencias significativas entre el uso de 100 mg/l de FOL (a partir de harina de pescado) y un fertilizante comercial en el cultivo de pepino orgánico, no obstante, el peso fresco y seco en hojas, tallos y frutos fueron mayores luego del uso del FOL de harina de pescado frente al fertilizante comercial. Mientras que, ^{Yuan et al. (2021}) señalaron que el uso de un hidrolizado de residuos de Enteromorpha prolifera + B. amyloliquefaciens tuvo un efecto sinérgico y demostró un mejor efecto promotor en el crecimiento en pimiento (cultivado en macetas), de hecho, la altura del tallo, número de hojas, longitud máxima de hojas, ancho máximo de las hojas y peso seco fueron 136%, 131%, 131%, 128% y 219%, respectivamente, en comparación con el control (agua).

El tratamiento de AA, suministrando hidrolizado de pescado, aumentó el contenido de pigmentos fotosintéticos en plantas de trigo (Triticum aestivum L.) en condiciones normales y con niveles de salinidad (0, 40 y 80 mM de NaCl), de hecho, la interacción del hidrolizado a 0 mM de NaCl reportó valores mayores de clorofila a con 2,258 mg/g, clorofila b con 1,962 mg/g y clorofila a+b con 4,272 mg/g, frente a otras fuentes orgánicas de AA (^{Bahari et al., 2013}). ^{Vijayakumar et al. (2019}) confirmaron que la aplicación de 20% de FOL de Codium decorticatum (114,93 mg/g de AA totales) aumentaron los parámetros de crecimiento y estimularon la absorción de nutrientes; luego de 30 días, las plantas de Capsicum annum L alcanzaron valores de 2,2 mg/g de clorofila a, 0,54 mg/g (peso fresco) de clorofila b y 2,72 mg/g de clorofila total. ^{Frioni et al. (2018}) reportaron efectos positivos de extractos de A. nodosum sobre la maduración y calidad de uvas de vino, cuya aplicación incrementó significativamente el contenido de antocianinas en condiciones de clima cálido y frío.

La incorporación de harina de pescado (g/maceta) (variable independiente) y la volatilización de amoniaco (ppm) luego del segundo día de su incorporación (variable dependiente) obtuvieron una correlación exponencial positiva, representada por y=1,3505e^0,3879x; la incorporación de 32,1 g/maceta redujo el pH del suelo a un valor alrededor de 5,1, no obstante, los valores de CE, el ácido fosfórico y N inorgánico fueron directamente proporcionales a la cantidad de harina de pescado incorporado (^{Kim et al., 2019}). La adición del iniciador bread al FOL de Sargassum sp. mostró un efecto significativo, luego de 21 días de aplicación, en la longitud de la raíz (28,33 cm) de la col china (Brassica rapa), también, el uso de 50% de urea y 50% de FOL (con iniciador tempe) mostró un mayor recuento con 19 hojas (^{Dewi et al., 2019}).

La aplicación de un compost compuesto por la mezcla de residuos de macroalgas, pescado y corteza de pino, a una tasa de 65 t/ha, mostró un incremento en la producción de papa orgánica en un 30%, respecto al uso de un fertilizante mineral, también, a esta misma tasa hubo un incremento en el contenido de azucares reductores (^{Illera-Vives et al., 2017}). La concentración de 20 mg/l de ácidos húmicos presentes en el compost de pescado promovió el crecimiento de lechuga, reflejado en el incremento de la materia radicular seca y húmeda, asimismo, el efecto de los ácidos húmicos tuvo un efecto en el aumento de 64% de la eficiencia del uso del agua, lo cual se relacionó con el aumento de 1,6 veces la longitud promedio de la raíz y la acidificación de la rizosfera (^{Busato et al., 2017}).

Por otro lado, la adición de compost de sedimentos de estanques + 1% de biocarbón al suelo tuvo un efecto significativo en el crecimiento de frijol (^{Dróżdż et al., 2020}). Mientras que la aplicación de EM tuvo un efecto positivo en la microbiología del suelo, aumentando los hongos activos en 8,58×10⁶ ufc/g, las levaduras activas en 1,02×10⁵ ufc/g y las bacterias promotoras del crecimiento en 1,98×10⁶ ufc/g, asimismo, el perfil taxonómico del suelo de las macetas tratadas con EM indicó que la familia Nakamurellaceae fue la más abundante con 38% (^{Hussain et al., 2021}). Por último, existe un vacío en investigaciones orientadas en el uso de compost de macroalgas en especies halófilas, por lo que el estudio de ^{Gibilisco et al. (2020}) obtuvieron buenos resultados en el crecimiento S. perennis, luego del uso de 50% compost de Undaria + 50% de perlita, seguido del uso del mismo compost al 75% y otro compost conformado por una mezcla de otras macroalgas.

5.3 Hidroponía

En el cultivo hidropónico, los Bacillus spp., presentes en el caldo de cultivo de residuos pesqueros biodegradado, formaron una relación con las raíces de las plantas y como resultado obtuvieron un mejor crecimiento que las plantas tratadas con el control (fertilizante comercial), de hecho, el caldo de cultivo se caracterizó por contener microorganismos, en cambio el sobrenadante no (^{Jung & Kim, 2016}).

^{Figueroa et al. (2015}) señalaron que el cultivo hidropónico de frijol rojo mostró cierta sensibilidad al ser tratado con el sobrenadante del cultivo biodegradado (fracción activa de materia orgánica en un fertilizante), reflejado en los resultados luego de la aplicación de la solución diluida en 1/1000, esta dilución condujo a un crecimiento de tallos y hojas menores en comparación al fertilizante comercial, en cambio, la dilución 1/1000 del sobrenadante, tuvo un efecto fertilizante mejor en el crecimiento de cebada, en comparación al uso de fertilizante comercial.

El estudio realizado por ^{Jung & Kim (2016}) en el crecimiento de frijol rojo y cebada indicaron que ambas especies crecieron de forma lenta durante los primeros 6 días, y posteriormente su crecimiento se aceleró, transcurrido 10 días, la longitud de las hojas del frijol rojo y cebada reportaron valores de 3,5 cm y 6,2 cm, respectivamente; finalmente, luego de 14 días las hojas de frijol y cebada alcanzaron una longitud de 4,9 cm y 9,7 cm, respectivamente. Por otra parte, ^{Gwon & Kim (2012}) evaluaron luego de 10 días la aplicación de FOL de residuos pesqueros, reportando valores en la longitud de hojas de frijol rojo y cebada de 4,5 cm y 9,4 cm, respectivamente. Mientras que, (^{Kang et al., 2020}), cultivaron cebada usando el sobrenadante del caldo de cultivo (producto de la biodegradación de residuos salinos), la dilución de 1/1000 del sobrenadante mostró, luego de 15 días, excelentes resultados en la longitud del tallo, el grosor del tallo, número de hojas y longitud de hojas, cuyos valores fueron aproximadamente de 12 cm, 0,2 cm, 2 hojas y 10 cm, respectivamente.

Por otro lado, ^{Goddek et al. (2016}) suministraron el sobrenadante de la digestión aeróbica y anaeróbica de efluentes piscícolas en el cultivo hidropónico de lechuga, obteniendo un rendimiento significativamente mejor, respecto al control; lo cual puede ser atribuido a la presencia predominante de amonio, materia orgánica disuelta, rizobacterias, hongos promotores del crecimiento y ácidos húmicos. Asimismo, ^{Jung & Kim (2020}) bombearon un biofertilizante, el cual recirculó continuamente a 1,2 l/min, las lechugas tratadas con el biofertilizante exhibieron un crecimiento mayor en comparación a los tratamientos control. Últimamente, (^{Kim et al., 2021}) lograron purificar, a partir de un hidrolizado de subproductos de caballa, péptidos (< 1kDa) promotores del crecimiento en plantas, específicamente, el heptapéptido (a 1 mg/ml) mostró una actividad antioxidante significativa, que se bioacumuló dentro de las hojas de trigo luego de 7 días de crecimiento en un sistema hidropónico.

5.4 Cultivo de alimento vivo

La producción de biomasa de microalgas como alimento vivo es importante para la nutrición marina, crecimiento y desarrollo de la fase larval de peces, moluscos y crustáceos, sin embargo, los medios de cultivo Yashima, F/2 de Guillard y CHO12, usados convencionalmente en el cultivo de microalgas a nivel comercial, implica costos elevados de producción (^{Sánchez-Torres et al., 2008}; ^{Sipaúba-Tavares et al., 2017}). Así, el desarrollo y evaluación de medios de cultivo alternativos (MCA) ricos en nutrientes y económicos tienen como fin la producción elevada de biomasa de microalgas a un menor costo de producción (^{Sipaúba-Tavares et al., 2017}).

La concentración de 1 ml/l de ensilado de residuos de pescado como MCA logró, a nivel de laboratorio, una producción mensual de 41,5 g/l de Nannochloropsis oculata, asimismo, la productividad máxima obtenida no presentó diferencias significativas respecto al uso de medio Yashima (^{Sánchez-Torres et al., 2008}). Mientras que, ^{Abdulsamad & Varghese (2017}) reportaron que la concentración de 12% de ensilado de pescado fue efectiva para el crecimiento y producción de biomasa de Scenedesmus sp., la cual, inicialmente fue cultivada a nivel de 100 ml y posteriormente se escaló a 10 l mediante el uso de 10% de inóculo (301,9x10⁴ células/ml), sin embargo, a este nivel se usó una concentración de 9% de ensilado; luego de 15 días, el contenido de proteínas, carbohidratos y lípidos fueron de 123,87; 44,904 y 84,21 mg/g de alga seca, respectivamente; adicionalmente, el contenido de clorofila a fue de 2,766 µg/ml.

^{Shanthi et al. (2021}) indicaron que el uso de 0,5% (v/v) de hidrolizado de residuos de pescado logró la mejora del peso celular seco, productividad de biomasa, contenido de proteína y síntesis de ficocianina en 34%, 39%, 15% y 98%, respectivamente, frente al medio de cultivo convencional Zarrouk. Asimismo, (^{Vidya et al., 2021}) reemplazaron de 50% de un medio inorgánico por residuos de pescado en polvo mejoró significativamente el crecimiento de Chroococcus sp. (693,6×10⁴ células/ml), C. saipanensis (426,03×10⁴ células/ml) y Chlorella sp. (551,8×10⁴ células/ml), en cambio, un reemplazo de 25% mostró un menor crecimiento de Dunaliella sp. (40,53×10⁴ células/ml)

Por otro lado, ^{Silva et al. (2011}) demostraron el potencial uso de sanguaza como MCA a nivel piloto para la producción de Tetraselmis suecica, debido al bajo costo que representó en comparación al uso de medio Yashima; el crecimiento máximo de la microalga se logró a una concentración de sanguaza y agua de mar de 3,5 % (v/v) y a pH de 8. En el caso de la actividad acuícola, ^{Guo et al. (2013}) evaluaron los efluentes generados en el cultivo de lenguado (filtrados a 0,45 µm y esterilizados) como MCA de Platymonas subcordiformis; el crecimiento de la microalga marina fue rápido al inicio y se mantuvo constante luego de 4 días; la biomasa de P. subcordiformis, luego de 14 días, fue 8,9 veces mayor que el nivel inicial, asimismo, la microalga removió entre el 87% a 95% de N y 98% de P en los efluentes del cultivo de lenguado. Mientras que, ^{Hidayati et al. (2020}) usaron un fertilizante elaborado a partir de residuos orgánicos generados en el cultivo de camarón (por fermentación), el cual fue enriquecido con urea, así, la relación N/P de 10/1 mostró una mayor población con 1030x10⁴ células/ml y una tasa media de crecimiento de 203x10⁴ células/ml/días durante la fase exponencial.

Por otro lado, el uso de FOL y BEs a base de macroalgas han sido evaluados como suplemento de los medios de cultivo convencionales y también como MCA, así, el suministro de hidrolizado ácido de la macroalga Valoniopsis pachynema demostró la mejora del crecimiento de Chlorella vulgaris, además, el máximo crecimiento del cultivo de la microalga se obtuvo a una concentración del 30% (^{Lakshmikandan & Murugesan, 2016}). Mientras que, el uso de EM, como MCA de Isochrysis galbana, demostró ser mejor que el medio F/2 de Guillard; los contenidos de proteínas, lípidos y cenizas, luego de la aplicación del EM, fueron similares al control, en cambio, el contenido de carbohidratos resultó mayor que el control (^{Rohani-Ghadikolaei et al., 2012}). Asimismo, ^{Alvarado et al. (2008}) cultivaron exitosamente Chaetoceros muelleri utilizando el EM compostadas a una concentración de 20 ml en 1 l de agua de mar; logrando obtener una máxima densidad celular de 3,09x10⁶ células/ml.

Por otro lado, la demanda de rotíferos Brachionus spp. (indispensable para la larvicultura) tiene como fin una acuicultura más rentable, por ende, el uso de compost de residuos de pescado logró incrementar la densidad poblacional de rotíferos debido a su contenido de nutrientes (^{Ogello et al., 2018}). Finalmente, una dosis de 0,25 ml/l de hidrolizado de pescado en estanques acuícolas mantuvieron los parámetros de calidad de agua dentro de niveles óptimos, de esta forma, el hidrolizado de pescado permitió el crecimiento y desarrollo de organismos planctónicos como algas verdes (Chlorophyta), cuya producción de plancton llegó a ser mayor que en el control, adicionalmente, esta dosis logró la producción de zooplancton de géneros Cyplops (100%), Copepoda (93,3%) y Cypridopsis (80%); obteniendo resultados similares al uso de vermi-compost como fertilizante (^{Sahu et al., 2016}).