Estos resultados se deben al aumento metabólico y la disponibilidad de nitrógeno y potasio en la semilla, además del aumento de α-amilasas que hidrolizan el almidón y aportan azúcares para el desarrollo del embrión (Shafiei & Ghobadi, 2012). Se debe tener en cuenta que los resultados positivos se obtuvieron remojando las semillas con KNO3 en momentos específicos. En el presente estudio, el KNO3 estuvo permanen-temente en contacto con el sustrato. Esto causó daños en el desarrollo y tamaño de las raíces, aumentando el número de raíces atrofiadas, disminuyendo el número de plántulas normales (Tabla 3). Este resultado concuerda con las observaciones de Marín et al. (2007), quienes informan que la aplicación de KNO3 inhibió la germinación en semillas de cebolla (Allium cepa), dando un menor porcentaje de germinación que el testigo y un mayor porcentaje de plántulas anormales. Deepti et al. (2018) encontraron 96.7% de germinación cuando las semillas de A. racemosus se estratificaron en caliente (35°C) seguidas de remojo en 1% de KNO3. En un estudio realizado con semillas de dos cultivares de trigo tratadas con KNO3, Shafiei & Ghobadi (2012) demostraron que con una concentración del 1,0% se obtenía un mayor porcentaje de germinación, pero al aumentar la concentración ese porcentaje disminuía para ambos cultivares. La inmersión de semillas de A. cepa en 50,5 mg/L de KNO3 afecta negativamente el vigor de las plántulas (Herrera et al., 2011). Ruttanaruang-boworn et al. (2017) descubrieron que aumen-tando la concentración de KNO3 se retrasa la imbibición de las semillas en arroz (Oryza sativa).
Cuando se excede la concentración de KNO3 se generan efectos negativos sobre la germinación como se demuestra en este estudio. Sin embargo, la aplicación excesiva de KNO3 a semillas de Delphinium denudatum, una planta medicinal procedente de Asia, es eficaz para su germinación (Prakash et al., 2023). Entre cultivares y variedades de una misma especie, el KNO3 no siempre responde de la misma manera. Por ejemplo, la aplicación de 0,2% de KNO3 fue efectiva para la germinación de tres cultivares de chile (Capsicum sp.), sin embargo, uno de ellos tuvo un mayor porcentaje de germinación que los otros dos (Andrade & Laurentin, 2015).
Por otro lado, el KNO3 contribuye en la mitigación de la dormición y el aumento del porcentaje de germinación en varias especies. Así, Choudhury & Bordolui (2022) reportan buenos resultados en semillas de garbanzo (Cicer arietinum L.) con KNO3 a una concentración de 100 ppm durante 8 horas. Sin embargo, Tapfumaneyi et al. (2023) señalan que en semillas de amaranto o kiwicha (Amaranthus sp.) y Cleome gynandra, que tienen dormición física y fisiológica, el KNO3 en concentraciones de 0,1, 0,2, 0,3, 0,4 y 0,5% no dio resultados positivos para romper dicha dormición. Está comprobado que el tratamiento con KNO3 no siempre será efectivo en todas las especies.
Tratamiento con ácido sulfúrico (H2SO4)
La mayoría de las semillas tratadas con H2SO4 tenían hongos a su alrededor. El H2SO4 tiene la capacidad de adelgazar la cubierta de la semilla para mejorar el intercambio de gases con el embrión (Sánchez et al., 2017). Sin embargo, cuando la concentración y el tiempo de remojo no son los adecuados, como aparentemente ocurrió en este estudio, el ácido destruye la cubierta de las semillas permitiendo la entrada de patógenos, provocando la muerte de éstas. En el presente estudio, la concentración de H2SO4 fue del 75% y la duración del remojo de solo 10 s, resultando en un porcentaje de germinación muy bajo, lo que indica que la alta concentración del ácido predispuso la muerte de las semillas.
La aplicación de H2SO4 al 80% durante 5 min a semillas de Abrus precatorius L., cuya dormición es alta, favoreció que siete tipos de hongos infectaran las semillas (Nikhade, 2017). Este tratamiento suele tener efectos negativos como la muerte de las cariópsides. Sin embargo, otros estudios reportan que en semillas con alta dormición como Atraphaxis spinosa y Euphorbia milii, especies de arbustos africanos, el H2SO4 es la mejor opción como tratamiento pregerminativo (Temel et al., 2023). Un estudio sobre semillas de un árbol forestal llamado Erythrophleum suaveolens reveló que el H2SO4 es el mejor tratamiento cuando se trata de la dormición tegumentaria (Douh et al., 2022).
Tratamiento con ácido giberélico (AG3)
La acumulación de nitrógeno en la semilla durante su formación reduce la dormición y también se relaciona con una menor necesidad de AG3 para lograr la germinación (Alboresi et al., 2005). En el presente estudio, el tratamiento con AG3 también provocó efectos negativos en la germinación, disminuyendo el porcentaje de plántulas normales respecto al testigo (Tabla 3). Aunque AG3 juega un papel importante a la hora de acelerar y mejorar la germinación de las semillas, tiene un límite, porque si se excede la concentración de AG3 se producen efectos negativos (Vafadust et al., 2022). Esto se observó en semillas de quina (Cinchona pubescens) tratadas con 0,1, 0,2 y 0,3% de AG3, cuya germinación fue de 33, 0 y 0%, respectivamente, resultados inferiores al testigo. Por este motivo, Campos et al. (2014) recomiendan tratar las semillas de quina con KNO3.
Para superar la dormición en semillas de Andropogon gayanus, Feitosa et al. (2015) utilizaron diversas dosis de AG3, demostrando que la más adecuada es 225 mg/L, ya que favoreció una máxima germinación. Sin embargo, cuando la dosis aumentó a 300 mg/L, la emergencia de plántulas disminuyó. Conversa et al. (2010) analizaron cuatro lotes de semilla de espárrago silvestre (Asparagus acutifolius L.) y encontraron que el GA3 solo mejoró la germinación de las semillas en uno de los lotes, a una tasa baja, concluyendo que las semillas de A. acutifolius se ajustan a las características de una latencia fisiológica no profunda.
La concentración de AG3 utilizada en el presente estudio no fue la más adecuada. Se ha demostrado que en arveja (Pisum sativum) la luz azul aumenta la giberelina inactiva afectando su crecimiento y, en otras especies, la luz roja aumenta la síntesis de giberelina favoreciendo la germinación (Iglesias & Talón, 2013). Al respecto, en muchas semillas las giberelinas reemplazan los requerimientos de luz o frío que necesitan para germinar, por lo que no siempre es necesaria su aplicación (Iglesias & Talón, 2013). Incluso dentro de una misma especie, la dosis de AG3 puede variar, así lo indica el estudio realizado con cinco genotipos de semillas de okra (Abelmoschus esculentus), que al ser remojadas con 0,02% de AG3, uno de los genotipos llamado Clemson mostró mayor germinación que los demás (Mekuria, 2023).
Semillas sin germinar
El porcentaje de semillas frescas fue inferior al 4% (Tabla 3). Cuando este porcentaje supera el 5% se relaciona con dormición fisiológica y para ello es necesario hacer la prueba de viabilidad. Si se demuestra que no son viables, las semillas pertenecen a la categoría de semillas muertas (ISTA, 2022). En este estudio no fue evidente ninguna dormición fisiológica. La dureza seminal es una forma de dormancia. Todos los tratamientos tuvieron un bajo porcentaje de semillas duras (5%). El testigo presentó un porcentaje ligeramente mayor que los demás tratamientos, sin tener diferencias estadísticas significativas con ellos. Esto podría deberse a que el agua, BAL, AG3 y KNO3 ayudaron a ablandar la cubierta de la semilla, permitiendo la entrada de agua y el intercambio de gases. Cabe señalar que la dureza de la semilla está relacionada con la dormición física, esto significa que la cubierta de la semilla no permite que el agua entre al embrión (Matilla, 2013). Por este motivo, se considera que podría existir una ligera dormición física en las semillas de espárrago estudiadas. Complementando la idea anterior, los espárragos pertenecen al orden Asparagales, que se caracteriza por tener fitomelanina en la cubierta exterior de la semilla. Esta sustancia le proporciona a la cubierta exterior el color negro y la dureza característica (Campbell et al., 2016). Esta dureza podría estar relacionada con la dormición. Sin embargo, la ISTA (2022) indica que la dureza de las semillas generalmente ocurre en Fabaceae y no menciona en qué porcentaje se debe considerar la prueba de viabilidad para esta categoría de semillas no germinadas.
Prueba de viabilidad
La capacidad de germinación de la semilla depende de los factores a los que estuvo expuesta durante su formación, predominando la temperatura sobre la germinación de la semilla y la luz sobre los rasgos de la planta (He et al., 2014; Huang et al., 2014). El fotoperiodo al que está expuesta la planta madre también influye en la dormición de sus semillas y el otro factor es el suelo que influye en la disponibilidad de nutrientes. Por otro lado, cuando las semillas están fuera de la planta madre, con el tiempo pierden viabilidad, por lo que un factor clave es el almacenamiento adecuado. Es muy probable que la semilla de espárrago utilizada en este experimento haya ido perdiendo viabilidad durante el almacenamiento desde que la semilla fue empaquetada en 2021 hasta que se hizo el estudio en 2022.
Se ha demostrado que el porcentaje de germinación de una semilla depende del manejo que haya recibido la planta madre y del cuidado que se le dé a la semilla después de la cosecha. Además, el grado de dormición que puede presentar está sujeto a varios factores, por lo que es muy variable dentro de una misma especie y mucho más entre especies. En este estudio, aunque no se demostró estrictamente la dormición, se ha comprobado que el testigo no logró superar el 80% de germinación. Esto podría deberse a una disminución en la calidad genética de la semilla al pertenecer a la segunda generación (F2) de un híbrido y a un aumento en la susceptibilidad a enfermedades. Esto fue observado por Hernández & Moreno (2014) en semillas de Sorghum bicolor, quienes no recomiendan la generación F2 porque la relación beneficio/costo es negativa.
4. Conclusiones
Las semillas de espárrago del cultivar UC-157 F2 no poseen dormancia porque la germinación obtenida con el mejor pre tratamiento de la semilla (Ecovida o bacterias ácido lácticas) no fue diferente a la obtenida con el testigo.
El pre tratamiento con Ecovida (bacterias ácido lácticas) favoreció la germinación sin provocar efectos negativos en las semillas. Esto sugiere que en el futuro los productos comerciales basados en bacterias ácido lácticas podrían sustituir a los fungicidas químicos. En este sentido, se recomienda realizar un estudio donde se compare un tratamiento con BAL y los fungicidas usados comúnmente durante la siembra de esparrago, a fin de comprobar si los resultados obtenidos en el presente estudio son útiles.
Agradecimientos
Esta investigación fue parcialmente financiada por el Proyecto de Inversión Pública 2361771 “Mejoramiento de la disponibilidad, acceso y uso de semillas de calidad de: papa, maíz amiláceo, leguminosas de grano y cereales, en las regiones de Junín, Ayacucho, Cusco y Puno. 4 departamentos” del Instituto Nacional de Innovación Agraria de Perú (INIA), con la contra-tación de los autores afiliados al INIA.
Referencias bibliográficas
Abdel-Aziz, S., Moustafa, Y., Hamed, H., & Elkhateeb, Y. (2014). Lactic Acid Bacteria in the Green Biocontrol against some Phytopathogenic Fungi: Treatment of Tomato Seeds. Journal of Basic and Applied Scientific Research, 4(12), 1-9.
Agro Perú Informa. 2024. Exportaciones de espárragos peruanos cierran el 2023 con precios al alza. Tomado de: https://www.agroperu.pe/exportaciones-de-esparragos-peruanos-cierran-el-2023-con-precios-al-alza/
Alboresi, A., Gestin, C., Leydecker, M. T., Bedu, M., Meyer, C., & Truong, H. N. (2005). Nitrate, a signal relieving seed dormancy in Arabidopsis. Plant Cell Environment, 28(4), 500-512. https://doi.org/10.1111/j.1365-3040.2005.01292.x
Alcántara, J., Acero, J., Alcántara, D., & Sánchez, R. (2019). Principales reguladores hormonales y sus interacciones en el crecimiento vegetal. NOVA, 17(32), 109-129.
Ali, M. M., Javed, T., Mauro, R., Shabbir, R., Afzal, I., & Yousef, A. (2020). Effect of Seed Priming with Potassium Nitrate on the Performance of Tomato. Agriculture, 10, 10.3390/agriculture10110498.
Andrade, S., & Laurentin, H. (2015). Effect of potassium nitrate on seed germination of three sweet pepper (Capsicum chinense Jacq.) cultivars. Revista UNELLEZ Ciencia y Tecnología, 33, 25-29.
Anguiano, S. J. M., Anguiano, C. J., & Palma, G. J. M. (2017). Inoculation of substrate with lactic acid bacteria for the development of Moringa oleifera Lam plantlets. Cuban Journal of Agricultural Science, 51(2).
Campbell, C. S., Kellogg, E. A., Stevens, P. F., Donoghue, M. J., & Judd, W. S. (2016). Plant systematics: A Phylogenetic Approach. Fourth edition. Sunderland, Massachusetts: Sinauer Associates, Inc.
Campos, J., Cerna, L., & Chico, J. (2014). Efecto del ácido giberélico, nitrato de potasio y agua de coco en la germinación de semillas de quina, Cinchona pubescens. Rebiolest, 2(1), 1-12.
Choudhury, A., & Bordolui, S. (2022). Inducement of Seed Priming with Potassium Nitrate on quality Performance of Chickpea (Cicer arietinum L.) Biological Forum –An International Journal, 14(4), 779-783.
Conversa, G., Lazzizera, C., & Elia, A. (2010). Effects of after-ripening, stratification and GA3 on dormancy release and on germination of wild asparagus (Asparagus acutifolius L.) seeds. Scientia Horticulturae, 125(3), 196-202. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2010.04.025
Deepti, P., Nima, T. B., Jai, S. C., & Yogesh. K. N. (2018). Effect of stratification and different soaking treatments on dormancy release and germination of Asparagus racemosus seeds. Vegetos, 31(1). https://doi.org/10.5958/2229-4473.2018.00022.8
Douh, C., Ekomono, C., Kessimo, R., & Koubouana, F. (2022). Nursery germination trial of Tali seeds, Erythrophleum suaveolens (Guill. & Perr.) Brenan. International Journal of Biological and Chemical Sciences, 6(6), 2611-2620.
Encina, C. L., & Regalado, J. J. (2022). Aspects of In Vitro Plant Tissue Culture and Breeding of Asparagus: A Review. Horticulturae, 8(5): 439. https://doi.org/10.3390/horticulturae8050439
FAOSTAT. Organización para la Agricultura y la Alimentación, Naciones Unidas, Roma. (2024). https://www.fao.org/faostat/es/#data/QCL
Feitosa, F., Júnior, I., David, A., Rodrigues, B., Damascena, N., Araujo, E., & Amaro, H. (2015). Efeito dos reguladores giberelina e citocinina na quebra de dormência de sementes de capim-andropogon. Revista de Ciências Agrárias, 38(1), 34-40.
Hanagasaki, T., & Nakasone, H. (2023). Maximizing marketable yield of green asparagus (Asparagus officinalis L.) cultivated in Miyako Island, Okinawa, Japan: Strategies for a typhoon-prone subtropical region. Fruits, 78(4), 1-9.
https://doi.org/10.17660/th2023/013
He, H., Souza, V. D., Snoek, L. B., Schnabel, S., Nijveen, H., Hilhorst, H., & Bentsink, L. (2014). Interaction between parental environment and genotype affects plant and seed performance in Arabidopsis, Journal of Experimental Botany, 65(22), 6603-6615. https://doi.org/10.1093/jxb/eru378
Hernández, L., & Moreno T. (2014). Análisis de las generaciones F1 y F2 de híbridos experimentales y comerciales de sorgo. Revista mexicana de ciencias agrícolas, 5(1), 49-59.
Herrera-Corredor, C., Carrillo-Castañeda, G., González-Hernández, V. A., Carrillo-Salazar, J. A., Peña-Valdivia, C. B., & García-Nava, J. R. (2011). Tratamientos químicos para recuperar la germinación en semillas de cebolla. Revista Chapingo Serie Horticultura, 17(2), 63-72.
Huang, Z., Footitt, S., Finch, S., & William, E. (2014). The effect of temperature on reproduction in the summer and winter annual Arabidopsis thaliana ecotypes Bur and Cvi, Annals of Botany, 113(6), 921–929. https://doi.org/10.1093/aob/mcu014
Iglesias, D. J., & Talón, M. (2013). Giberelinas. In: J. Ascon-Bieto y M. Talón. (Eds.). Fundamentos de la fisiología. 399-417. McGraw-Hill - Interamericana de España, s. l.
ISTA. International Seed Testing Association. (2003). Tetrazolium Testing Handbook. Asparagus, Liliaceae. v.1, (1st.ed).
ISTA. International Seed Testing Association. (2022). International Rules for Seed Testing, Zürichstr, Bassersdorf, Suiza.
Kang, S. M., Radhakrishnan, R., You, Y. H., Khan, A. L., Park, J. M., Lee, S. M., & Lee, I. J. (2015). Cucumber performance is improved by inoculation with plant growth-promoting microorganisms. Acta Agriculturae Scandinavica, Section B-Soil & Plant Science, 65(1), 36-44
Lamont, J. R., Wilkins, O., Bywater, E. M., & Smith, D. (2017). From yogurt to yield: Potential applications of lactic acid bacteria in plant production, Soil Biology and Biochemistry, 111, 1-9. https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2017.03.015
Limanska, N., Ivanytsia, T., Basiul, O., Krylova, K., Biscola, V., Chobert, J., Ivanytsia, V. O., & Haertlé, T. (2013). Effect of Lactobacillus plantarum on germination and growth of tomato seedlings. Acta Physiologiae Plantarum, 35(5), 1587–1595. https://doi.org/10.1007/s11738-012-1200-y
Lutz, M. P., Michel, V., Martinez, C., & Camps, C. (2012). Lactic acid bacteria as biocontrol agents of soil-borne pathogens. Biological Control of Fungal and Bacterial Plant Pathogens, 78, 285-288.
Macías-Holguín, C., Canchignia-Martínez, H., Delgado-Basurto, V., Paucar-Nieto, F., Arellano-Ibarra, K., & Cedeño-Moreira, A. (2023). Efectos de la co-inoculación de Bioformulados (PGPR´s) sobre el porcentaje de germinación y promover el crecimiento en plántula de papaya (Carica papaya L.). Manglar, 20(2), 149-155. http://dx.doi.org/10.57188/manglar.2023.017
Marín, S. J., Mejía, C. J. A., Hernández, L. A., Carballo, C. A., & Peñam, L. A. (2007). Acondicionamiento osmótico de semillas de cebolla (Allium cepa L.). Agricultura Técnica en México, 33(1), 63-71. https://www.scielo.org.mx/pdf/agritm/v33n1/v33n1a7.pdf
Matilla, A. (2013). Desarrollo y germinación de las semillas. In: Ascon-Bieto, J. and Talón, M. (Eds.). Fundamentos de la fisiología. McGraw-Hill - Interamericana de España, s. l., p. 537-556.
Mekuria, B. S. (2023). Effect of Seed Priming Methods on Seed Quality of Okra (Abelmoschus esculentus (L.) Moench) Genotypes, Advances in Agriculture, 2023: 1-9. https://doi.org/10.1155/2023/3951752
MIDAGRI. (2024). MIDAGRI: Perú batió récord de exportaciones agrarias superando los US$ 10 mil millones en ventas. https://www.gob.pe/institucion/midagri/noticias/903081-midagri-peru-batio-record-de-exportaciones-agrarias-superando-los-us-10-mil-millones-en-ventas
Mohammad-Fahrulazri, J., Nurfaten Farhanah, R., Mohd, T. Y., Noor, B. S., Norhayati, R., Nur, A. I. M. Z., & Amalia, M. H. (2022). Investigating the potential of endophytic lactic acid bacteria isolated from papaya seeds as plant growth promoter and antifungal agent. Pertanika J. Trop. Agric. Sci. 45(1), 207–233. https://doi.org/10.47836/pjtas.45.1.12
Murthy, K. N., Malini, M., Savitha, J., & Srinivas, CH. V. V. (2012). Lactic acid bacteria (LAB) as plant growth promoting bacteria (PGPB) for the control of wilt of tomato caused by Ralstonia solanacearum. Pest Management in Horticultural Ecosystems, 18(1), 60-65.
Nguyen, H. H., & Le, B. T. T. (2021). Use of lactic acid bacteria in peanut seed treatment. Journal of Technology & Innovation, 1(1), 20-22. http://doi.org/10.26480/jtin.01.2021.20.22
Nikhade, C. A. (2017). Effect of chemical treatments on Abrus precatorius L. seeds. Cosmos Multidisciplinary Research E-Journal, 2(1), 68-73.
Prakash, S., Patni, B., Jangpangi, D., & Chauhan, J. (2023). Estudios sobre germinación de semillas de Delphinium denudatum Wall. Ex Hook & Thoms. Revista trimestral de ciencias biológicas, 20(2), 255-257.
Ruttanaruangboworn, A., Chanprasert, W., Thobunluepop, P., & Onwimol, D. (2017). Effect of seed priming with different concentrations of potassium nitrate on the pattern of seed imbibition and germination of rice (Oryza sativa L.). Journal of Integrative Agriculture, 16(3), 605-613. https://doi.org/10.1016/S2095-3119(16)61441-7
Salgado, P. T., Myazin, G. N., Kozhokina, N. A., & Brekhov, T. P. (2021). El efecto de los microelementos sobre la germinación de semillas y el rendimiento de la masa verde de trigo de invierno en el periodo vegetativo. Prisma Tecnológico, 12(1), 54-59. https://doi.org/10.33412/pri.v12.1.2846
Sallam, A. R., Hegazi, G. A. M., & Bekheet, S. A. H. (2023). Synthetic seeds for in vitro preservation of Asparagus officinalis L. Bulletin of the National Research Centre, 47(72). https://doi.org/10.1186/s42269-023-01043-8
Sánchez-Soto, B. H., Pacheco-Aispuro, E., Lugo-García, G. A., Reyes-Olivas, A., & García-Moya, E. (2017). Métodos de escarificación en semillas de Guaiacum coulteri, especie amenazada del bosque tropical caducifolio del norte de Sinaloa, México. Gayana Bot., 74(2), 262-268.
Shafiei, A. M., & Ghobadi, M. (2012). The effects of source of priming and post-priming storage duration on seed germination and seedling growth characteristics in wheat (Triticum aestivum L.). J. Agric. Sci, 4(9), 256-268. http://dx.doi.org/10.5539/jas.v4n9p256
Shehzad, M., Ayub, M., Ahmad, A. U. H., & Yaseen, M. (2012). Influence of priming techniques on emergence and seedling growth of forage sorghum (Sorghum bicolor L.). Journal of Animal and Plant Sciences, 22(1), 154-158.
Short, W., & Wolyn, D. (2022). Effects of decreasing photoperiod on cold acclimation of asparagus seedlings. Canadian Journal of Plant Science, 102(4), 875–883. https://doi.org/10.1139/cjps-2021-0273
Tapfumaneyi, L., Dube, P., Mavengahama, S., & Ngezimana, W. (2023). Effect of gibberellic acid and potassium nitrate seed treatments on the emergence and seedling vigor of Amaranth and Cleome gynandra. Agrosyst Geosci Environ, 6(1), 1-13. https://doi.org/10.1002/agg2.20359
Temel, S., Keskin, B., & Çakmakçi, S. (2023). Effect of different dormancy-breaking methods on seed germination and vigour of Atraphaxis spinosa. Zemdirbyste-Agriculture, 110(1), 39–46. https://doi.org/10.13080/z-a.2023.110.006
Tillman, M. A. A., Madruga-Tunes, L., & Almeida, A. S. (2019). Análise de Sementes. In: Peske S.T.; Villela, F.A.; Meneghello, G.E. (Eds.) Sementes: Fundamentos Científicos e Tecnológicos. Pelotas: Editora Becker & Peske Ltda, p.147-253.
Turaeva, B. I., Qizi, K. K. F., Soliev, A. B., & Kutlieva, G. J. (2021). Gibberellic and indole acetic acids producing features of bacteria from the genus lactobacillus and their effect on plant development. Asian Journal of Biological and Life Sciences, 10(3), 681–686.
Vafadust, M., Mahmoudi, J., & Naseri, B. (2022). Investigation the effect of priming treatments on germination characteristics of Trifolium resupinatum. Journal of Seed Research, 12(2), 24-32. https://doi.org/10.30495/jsr.2023.1978072.1245
Yamaguchi, T., & Maeda, T. (2015). Effect of High-Temperature Treatments on the Breaking of Dormancy in One-Year-Old Asparagus (Asparagus officinalis L.). Environ. Control Biol., 53(1), 2326, 2015. https://doi.org/10.2525/ecb.53.23
Yamaguchi, T., & Maeda, T. (2020). Asparagus production from autumn to winter in Japan: current status and novel techniques of the Fusekomi forcing culture. Acta Hortic. 1301, 11-116
https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2020.1301.16