1. Introducción
Los lepidópteros se consideran el segundo orden de la Clase Insecta más abundante y diversa de los ecosistemas terrestres. El término mariposa se usa a menudo para referirse a especies que vuelan durante el día y por tener antenas que terminan en un clavo; las polillas, son las especies más comunes que vuelan de noche y se caracterizan por tener antenas muy diferentes (Bibas et al., 2020; Lamas, 2000; Nakahara et al., 2020). Los lepidópteros proveen grandes beneficios ecológicos en los diversos hábitats, como ser el primer eslabón en la cadena trófica, como polinizadores e indicadores biológicos de calidad en los ecosistemas naturales (Aguilera et al., 2019; Vásquez et al., 2017).
Existen más de 250000 especies de lepidópteros en el mundo, siendo descritas por diversos estudios alrededor de 150000 especies. La región Neotropical, muestra una gran diversidad de lepidópteros (alrededor de 35%); aproximadamente el 42% de las mariposas diurnas se encuentran en el Neotrópico (Ashfaq et al., 2017; Farfán, 2018; Lamas et al., 2021).
Perú es uno de los países que cuenta con áreas prioritarias para la conservación ya que tiene un alto índice de diversidad de especies y endemismo; una de esta biodiversidad son los lepidópteros. Asimismo, existen gran variedad de trabajos de investigación de lepidópteros fundamentalmente en Ucayali, Madre de Dios, Cajamarca, Loreto, Junín, Huánuco, Puno y Amazonas, en lugares donde se han producido reducido impacto a causa del ser humano (Farfán, 2018; Farfán et al., 2020; Levi et al., 2017).
Los lepidópteros en Perú son continuamente amenazados debido a que la mayoría de los ecosistemas actuales están sujetos a una o más formas de perturbación antropogénica, especialmente contaminación y acidificación, modificación y fragmentación del hábitat e invasiones de especies introducidas (Cerdeña et al., 2014; Levi et al., 2017). Dada la escala espacial generalizada y temporal rápida de los cambios ambientales antropogénicos actuales, se necesitan métodos para elegir especies o conjuntos de especies apropiados para establecer prioridades de conservación y monitorear las respuestas bióticas al cambio ambiental local y global; donde son amenazados los hábitats de los lepidópteros y la diversidad se puede minimizar llevando a cabo una gestión de la conservación diseñada después de seguimiento de la diversidad, abundancia y distribución (Guzman & Vásquez, 2018; Kremen, 1992; Sajjad et al., 2020). Además, la condición del hábitat y la ecología de los lepidópteros también son factores importantes que se deben conocer antes de los esfuerzos de conservación (Kremen, 1992; Moraes et al., 2021).
La diversidad de los lepidópteros puede incrementar-se aumentando la variabilidad y disponibilidad de plantas de néctar y plantas forrajeras para larvas (Palacios-Mayoral et al., 2018; Valencia-Montoya et al., 2021). La desaparición de las plantas alimenticias de larvas puede conducir a la extinción de estos y los factores abióticos como la temperatura, la humedad y la intensidad de la luz afectan la diversidad de los lepidópteros (Grados et al., 2021; Vásquez-Bardales et al., 2021). El aumento de la temperatura y la intensidad de la luz afectan positivamente la diversidad, abundancia y distribución de los lepidópteros (Murgas et al., 2017).
En tal sentido, la presente investigación tuvo como objetivo determinar la abundancia y diversidad de lepidópteros de la Comunidad Andina de San Benito, Cajamarca, Perú.
2. Materiales y métodos
Lugar de ejecución
El presente estudio se realizó en la comunidad andina de San Benito, con una superficie de 466,6 km2, perteneciente a la provincia de Contumaza, del departamento de Cajamarca, ubicada en las coordenadas geográficas 07°25´30´´ Latitud Sur, 78°55´38´´ Longitud Oeste y 1373 m.s.n.m. de altitud.
Técnicas de muestreo
Se realizaron muestreos, utilizando la técnica del transecto, con una periodicidad mensual durante el 2021, en las zonas ribereñas y vegetaciones aledañas de la comunidad andina de San Benito (Tabla 1). Se realizaron 7 transectos o unidades de muestreo (UM) de 500 m lineales, abarcado toda la comunidad andina de San Benito.
Tabla 1
Puntos de muestreo de lepidópteros, comunidad andina de San Benito, Cajamarca
Unidades de muestreo (UM) | Coordenadas geográficas |
Latitud Sur | Longitud Oeste |
UM 1 | 7°28´37,0'' | 79°02´52,4´´ |
UM 2 | 7°27´26,5´´ | 79°00´59,6´´ |
UM 3 | 7°24´47,2´´ | 78°58´21,4´´ |
UM 4 | 7°26´25,3´´ | 78°55´13,5´´ |
UM 5 | 7°24´47,2´´ | 78°52´32,9´´ |
UM 6 | 7°31´14,5´´ | 78°52´05,7´´ |
UM 7 | 7°24´21,5´´ | 78°54´11,7´´ |
Técnicas de recolección
La recolección de lepidópteros se realizó con redes entomológicas manuales y trampas de luz. La red entomológica, fabricada con un aro de metal de 20 cm de radio, con un cono de 1 m de tela tul, terminado la punta de este cono de forma de redondeada; el mango de la red compuesto por 6 secciones de 60 cm cada una; al unirse toda la estructura fue de 4 m de largo (Andrade-C et al., 2013).
El muestreo, se realizó durante una semana por cada mes en el transcurso de un año de 7:00 hasta 12:00 horas y por la tarde desde las 14:00 hasta 16:30 horas. Las muestras capturadas fueron colocadas en sobres entomológicos para su traslado al laboratorio de entomología de la Universidad Nacional de Trujillo.
En cada transecto se instaló una estación de muestreo de dos trampas de luz, utilizando por cada trampa una lámpara de luz mixta de 250 watts, un generador portátil como fuente de poder y un soporte circular con tela blanca. La trampa de luz fue utilizada entre las 6:30 pm hasta las 2:00 am del día siguiente. Para la mayor eficiencia de las trampas de luz, el trabajo de campo fue en el período de luna nueva.
Técnicas de preservación
El material fue disecado y estudiado en el laboratorio de entomología de la Universidad Nacional de Trujillo.
Las estructuras morfológicas de la cabeza y los genitales se examinaron bajo un microscopio estereoscópico Olympus. La separación de los esqueletos quitinosos de los genitales se efectuó mediante la degradación de los tejidos blandos con una solución caliente de KOH al 10% y se preservaron en viales de glicerina. Las fotos de los adultos se tomaron con una cámara digital CANON Power Shox 65 HS. En las descripciones de los diseños alares se utilizaron las siguientes abreviaciones: DAA: cara dorsal del ala anterior; DAP: cara dorsal del ala posterior; VAA: cara ventral del ala anterior; VAP: cara ventral del ala posterior (Andrade-C et al., 2013).
Determinación taxonómica
Se llevó a cabo en el laboratorio de entomología de la Universidad Nacional de Trujillo, utilizando claves taxonómicas e investigaciones de especialistas para determinación taxonómica de lepidópteros.
Análisis de datos
En la abundancia se denomina como absoluta a la cantidad de individuos de cada especie presentes en la superficie de las 7 unidades de muestreo; y, la abundancia relativa, es la composición porcentual de capa especie (López-Hernández et al., 2017).
En la Diversidad, se utilizó el índice de Margalef, la cual considera la distribución numérica de los individuos de las diversas especies de lepidópteros presentes en el estudio; índice de Simpson, nos da a conocer la probabilidad de que dos individuos tomados al azar de una comunidad infinitamente mayor sean de la misma especie; y, el índice de Shannon-Wiener; es un logaritmo que expresa la diversidad de especies independientes de su medio. Estimados utilizando el programa Past 4.03 (Castellanos-Bolaños et al., 2008; Magurran, 2004; Shannon & Weaver, 1964).
3. Resultados y discusión
Se registraron 206 individuos, correspondientes a 7 familias, 9 subfamilias, 6 tribus pertenecientes y 20 especies, de las cuales Vanessa braziliensis MOORE (n=11), Juniona evarete CRAMER (n=13), Danas gilipus CRAMER (n=13), Heliconius clysonymus LATREILLE (n=15), Phoebis argante FABRICIUS (n=15), Phoebis sennae LINNAEUS (n=16), Ascia monuste LINNAEUS (n=11), Urbanus proteus LINNAEUS (n=13), Urbanus dorantes STOLL (n=10), Pseudolycaena marsyas LINNAEUS (n=10), Rhetus periander CRAMER (n=10) y Papilio paeon BOISDUVAL (n=14) son las más abundantes en la comunidad andina de San Benito.
La diversidad de mariposas encontrada en la comunidad andina de San Benito y alrededores fue muy notoria en las diferentes épocas de muestreo. Los campos de la zona muestreada poseen una vegetación muy heterogénea, con bosques primarios (partes altas) e intervenidos (parte baja), los cuales colindan con el Sendero del centro poblado. Esta heterogeneidad favorece y puede mantener una alta diversidad de mariposas (Brown & Freitas, 2002). En la comunidad andina de San Benito, siendo una zona con influencia humana, se evidenció notable diferencia con su alrededor. Además, fue evidente la observación de una diversidad de especies de lepidópteros comunes de las zonas perturbadas, conservadas y urbanas (Ramírez-Restrepo et al., 2007).
Se reporta que las familias con el mayor número de especies son la Nymphalidae con 9 especies y Pieridae con 5 especies, representado 40,3% y 28,2% de capturas respectivamente; y, las familias con menor número de especies fueron Hesperidae con 2 especies, Lycaenidae, Riodinidae, Papilionidae y Noctuidae, con 1 especie cada uno (Tabla 2).
Actinote anteas DOUBLEDAY, 1847. Presenta un patrón de bandas rojas o anaranjadas en las alas anteriores. The genus Actinote comprises of thinly scaled species whose wings often have a translucent and shiny appearance.Alas a menudo tienen una apariencia translúcida y brillante. The closely related genera Abananote and Altinote , are more heavily scaled and boldly marked. Considerado como modelo tóxico que forman parte de un complejo anillo de mimetismo batesiano/ mulleriano.
There are 36 known Actinote species.Adelpha iphiclus LINNAEUS, 1758. The wingspan is about 47 mm.La envergadura es de aproximadamente 47 mm. [2] Adult males engage in mud-puddling . Los machos adultos se involucran en un charco de barro.Adults of both sexes feed at over-ripe fruits of mango , Guazuma and Genipa , but have also been observed feeding on the nectar of Vochysia and Paullinia flowers. Los adultos de ambos sexos se alimentan de frutas demasiado maduras de mango, pero también se ha observado alimentándose del néctar de las flores. The larvae feed on Calycophyllum candidissimum , Isertia and Uncaria species. Las larvas se alimentan de especies de Uncaria sp, de las puntas de las hojas. It constructs a chain of frass along the midrib. Construye una cadena de excrementos a lo largo del nervio central.
Vanessa braziliensis MOORE, 1883. Mariposa de tamaño mediano. Color rosado-anaranjado-pardusca con manchas irregulares, negro y blanco en la parte superior, y tienen partes inferiores crípticas jaspeadas en verde oliva y gris, con dos ocelos post-medianos de diferentes tamaños en las alas posteriores.
Juniona evarete CRAMER, 1779. Envergadura entre 4,5 – 5,7 cm. Sexos similares. Ala anterior de color café oscuro, con dos manchitas anaranjadas en la celda discal. En el área marginal y postmedia una franja irregular de color anaranjado con un ocelo de color negro con pupila celeste. Ala posterior de color café oscuro, con dos ocelos de color negro con pupila celeste y anillo amarillo, con una franja anaranjada angosta en el área marginal.
Eueides isabella STOLL, 1781. Parte superior de las alas es de color marrón oscuro, con bandas anaranjadas y manchas amarillas en los bordes de las alas anteriores. La parte inferior de las alas es bastante similar a las partes superiores, pero los bordes de las alas posteriores presentan una serie de manchas azules.
Danas gilipus CRAMER, 1775. De color anaranjado o marrón, con bordes de las alas negras y pequeñas puntas blancas hacia adelante en la superficie del ala dorsal, la superficie ventral del ala es rojiza muy similar a la superficie dorsal. Las alas posteriores en la superficie ventral las venas son negras con manchas blancas y borde negro.
Hamadryas feronia LINNAEUS, 1758. Parte superior del ala anterior como un mosaico de color blanco, marrón y gris azulado, con una hilera de pequeñas manchas oculares paralelas al margen externo; una pequeña barra roja ocupa la celda discal. La parte superior de las alas posteriores es similar, pero con pocos manchas blancas y grandes manchas oculares. La parte inferior del ala anterior es blanca con marcas oscuras, una pequeña barra roja y una mancha sub marginal negra, y la parte inferior es blanca o de color marrón-blanquecino, con manchas oscuras y anillos azules con manchas oculares más grandes en el margen posterior.
Heliconius clysonymus LATREILLE 1817. Envergadura alar de 7 - 8 cm. Color marrón oscuro a negro con rayas amarillas. Se distingue de todas las demás especies por la ancha banda medial roja en las alas posteriores. Longitud de proyección: 37- 42 mm. (De Vries, 1997).
Anthanassa tulcis H. BATES, 1864. Expansión alar 3,2 – 3,5 cm. Margen externo de la punta del ala está ligeramente dentada. La parte superior es negro con marcas blancas. Ala posterior con amplia banda mediana blanca.
Phoebis argante FABRICIUS, 1775. Todas las especies de Phoebis son sexualmente dimórficas. Los machos son de color amarillo brillante arriba, con un parche grueso de escamas androconiales mate alrededor de la célula anterior. Las hembras son más pálidas en ambas superficies de las alas. Parte inferior de la cabeza y el cuerpo amarillo mostaza. Cabeza marrón y abdomen amarillo pálido dorsalmente. Parte superior del tórax negro con escaso cabello blanco amarillento. Antenas marrones. Ojos bicolores, marrones sobre amarillo debajo. Probóscide negra. Patas amarillas.
Phoebis sennae LINNAEUS, 1758. Ambos sexos difieren entre sí. El ala frontal (AF) del macho es amarilla sin ninguna marca. El color de la hembra es amarillo-anaranjado con puntos marrones en el margen del ala y tiene un punto marrón prominente al final del AFS. En el área dorsal el macho es amarillo y a veces posee marcas blancas rodeadas por bordes marrones. En la hembra los puntos marrones tienden a ser más oscuros que en el macho.
Eurema deva DOUBLEDAY, 1847. Mariposas de tamaño relativamente pequeñas, de color amarillo con el ápice pardo oscuro-negruzco, en la cara dorsal de ala anterior. En la cara ventral tiene como un guion pardo-rojizo.
Ascia monuste LINNAEUS, 1764. Adulto totalmente diurno Superficie superior es blanco del ala anterior con un patrón de zigzag negro en el margen exterior. La forma femenina de la estación seca se asemeja al macho con un patrón de zigzag negro más pesado y una pequeña mancha negra en la celda del ala. La hembra de la estación húmeda se oscurece con escamas negras arriba y abajo.
Dismorphia nemesis LATREILLE, 1813. Expansión alar de 55 – 65 mm. Adultos son sexualmente dimorfos. El macho presenta puntos apicales más grandes y con mayor tendencia a fusionarse, mancha subocelar pos discal bien formada. La extensión del margen posterior amarillo en alas posteriores, la banda infra discal negra es estrecha. Margen posterior de las alas posteriores es ligeramente cóncavo en M3 y Cu2.
Urbanus proteus LINNAEUS, 1758. Color marrón oscuro, alas posteriores alargadas. Alas anteriores son marrón con unas bandas blancas por arriba y verde iridiscente cerca del centro. Cabeza grande, ojos prominentes. Cabeza tórax y abdomen poseen escamas verdes. Alas posteriores de color marrón oscuro mesclado con violeta claro y bandas blancas. La hembra es más grande que el macho.
Urbanus dorantes STOLL, 1790. Cola con manchas doradas. Ala anterior de 22 mm, cola de 10 mm, vuelo saltarín, en matorral florido claro de bosque.
Pseudolycaena marsyas LINNAEUS, 1758. El azul de Cambridge tiene una envergadura de 40-50 mm. Falsa cabeza falsa The upper side of the wings ranges between a shimmering cobalt El lado superior de las alas se extiende entre un cobalto brillante blue to turquoise (Fig. 1) whilst the underside appears grey with scattered black dots azul a turquesa mientras que la parte inferior aparece gris con puntos negros dispersos. (Stiling, 1986).This species exhibits sexual dimorphism (where males and females differ Esta especie exhibe dimorfismo sexual (donde los machos y las hembras son diferentes in appearance); en apariencia); males are larger than females and are darker blue in colour whilst females los machos son más grandes que las hembras y son de color azul más oscuro, mientras que las hembrascan be as light as a pale green (Barcant, 1970). puede ser tan claro como un verde pálido. Unlike males, females have rounded wing A diferencia de los machos, las hembras tienen alas redondeadas en el apexes (tips), however both sexes have tailed hind wings with a black spot nearby on ápices, sin embargo, ambos sexos tienen en las alas posteriores con cola y con una mancha negra. cerca en both upper and undersides (Austin et al., 2007) (Figs 1 and 2). tanto superior como inferior. REFERENCES
Rhetus periander CRAMER, 1777. Palpos cortos y brillo azul en la superficie superior de las alas. Rhetus están estrechamente relacionados con Ancyluris y tienen una forma de ala muy similar. En Ancyluris, sin embargo, hay una iridiscencia azul en la parte inferior de las alas, pero no en la parte superior.
Papilio paeon BOISDUVAL, 1836. Mariposa muy llamativa y grande de 8 cm de longitud, 12 cm de expansión alar, de color marrón oscuro y amarillo intenso a manera de manchas redondeadas que se suceden unas de otras. El ala posterior termina en una prolongación a manera de cola en forma espatulada.
Catocala nymphaea ESPER, 1787. Mide 5 cm de envergadura alar. En posición de reposo se observa solo el dorso de las alas anteriores con su dibujo de varios tonos oscuros, que le sirve para camuflarse de manera perfecta sobre las cortezas de los árboles. Cuando las alas anteriores se desplazan, se observa las alas posteriores coloreadas de anaranjado contrastando con bandas negras. Cuerpo grueso y piloso, de color oscuro similar al de las alas anteriores. Las antenas son cortas y estrechas. No se distingue fácilmente entre los sexos.
4. Conclusiones
De acuerdo al estudio sobre la determinación taxonómica de lepidópteros en la comunidad andina de San Benito, se logró identificar siete familias: Nymphalidae, Pieridae, Hesperiidae, Papilionidae, Riodinidae, Lycaenidae y Noctuidae; nueve sub familias: Nymphalinae, Heliconinae, Acraeinae, Disphorminae, Coliadinae, Pierinae, Eudaniinae, Riodininae, Teclinae y seis tribus: Melitaeini, Danaini, Nymphalini, Acraeini, Riodinini y Eumaeini. Además de veinte especies Actinote anteas, Adelpha iphiclus., Vanessa braziliensis, Juniona evarete, Eueides isabella, Danas gilipus. Hamadryas feronia, Heliconius clysonymus, Anthanassa tulcis, Phoebis argante, Phoebis sennae, Eurema deva, Ascia monuste, Dismorphia nemesis, Urbanus proteus, Urbanus Dorantes, Pseudolycaena marsyas, Rhetus periander, Papilio paeon y Catocala nymphaea de lepidópteros asociados al follaje de la vegetación nativa de la zona.
Las familias con el mayor número de especies son la Nymphalidae con 9 especies y Pieridae con 5 especies, representado 40,3% y 28,2% de capturas respectiva-mente.
Los índices de diversidad representan de mediana a alta diversidad de especies de lepidópteros.
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