Capacidad acumuladora de cadmio en raíces de Scirpus californicus expuestas a diferentes concentraciones de nitrato de cadmio en condiciones de laboratorio

Autores/as

  • Lili E. Fernández Aguilar Universidad Nacional de Trujillo
  • Santos Enrique Padilla Sagástegui Universidad Nacional de Trujillo

Resumen

Se determinó la capacidad acumuladora de cadmio en raíces de Scirpus californicus  en condiciones de laboratorio; para ello, luego de la aclimatación y adaptación del material experimental durante 30 días, se aplicó el diseño experimental de estímulo creciente con cinco tratamientos: 0; 0,5; 1,0; 1,5 y 2,0 ppm de cadmio, durante 15 días. La concentración de cadmio en las raíces se determinó mediante la técnica de Espectrofotometría de absorción atómica, cuyos datos se procesaron mediante Análisis de varianza y el método de Mínima Diferencia Significativa Honesta entre las muestras que presentaron diferencias significativas y para diferenciar los cambios de color y crecimiento se realizaron evaluaciones cualitativas tomando como referencia la Escala de Likert. Se encontró que las raíces del tratamiento con 1,5 y 2,0 ppm de cadmio acumularon mayor cantidad de este elemento, con cambios severos en el color, engrosamiento y crecimiento longitudinal. Se concluye que las raíces de S. californicus  tienen capacidad de acumular, tolerar y resistir altas concentraciones de cadmio.

Palabras clave: Capacidad acumuladora, Cadmio, Scirpus californicus, espectrofotometría de absorción atómica.

Citas

Arias M, Betancur T, Gomez R, Salazar G, et al. Fitorremediación con humedales artificiales para el tratamiento de aguas residuales porcinas. Informador técnico 2010; 74: 12-22.

Jaramillo J, Flores C. Fitorremediación mediante el uso de dos especies vegetales Lemna minor (Lenteja de agua), y Eichornia crassipes (Jacinto de agua) en agua residuales producto de la actividad minera. Tesis de Ingeniero Ambiental. Universidad Politécnica Salesiana. Colombia. 2012.

Benítez P. Evaluación de la distribución de metales pesados en las plantas acuáticas Jacinto de agua (Eichhornia crassipes) y Tul (Thypa spp) utilizadas en la planta de tratamiento de aguas residuales la Cerra, Villa Canales por medio de fluorescencia de Rayos X. Tesis de Maestro en Ciencias en Ciencia y Tecnología del Medio Ambiente. Universidad de San Carlos de Guatemala. 2008.

Hauenstein E, Ramírez C, González M, Leiva L, et al. Flora hidrófila del Lago Villarrica (IX Región, Chile) y su importancia como elemento indicador de contaminación. Rev Medio Ambiente 1996; 13 (1): 88-96.

Karpiscak M, Foster K, Hope S, Warshall P. Using water hyacinth Eichornia crassipens to treat wastewater. Arid Lands Newletter 1992; 32: 6-12.

Jain S, Valsudevan P, Jha N. Azolla pinnata R Br. and Lemna minor for Removal of lead and Cadmium from Polluted Water. Wat. Res. 1990; 24 (2):177-183.

Contreras S. Determinación de metales traza (Ni, Cr, Cd, Fe, Mg, Al) en totora (Scirpus californicus) y sedimento en el santuario de la naturaleza Carlos Anwandter, río Cruces, Valdivia. Tesis de Químico Farmacéutico de la Universidad Austral de Chile. 2006.

Boniardi N, Rota R, Nano G. Effect of dissolved metals on the organic load removal efficiency of Lemna gibba. Water Res 1999; 33(2): 530-538.

Ye Z, Baker A, Wong M, Willis A. Zinc, lead and cadmium tolerance, uptake and accumulation by the common reed Phragmites australis (Cav.) Trin. ex Steudel. Ann Bot 1997; 80(3): 363-370.

Burke D, Weis J, Weis P. Release of metals by the leaves of the salt marsh grasses Spartina alterniflora and Phragmites australis. Estuarine, Coastal and Shelf Science 2000; 51: 153-159.

Mostacero, L., Mejía, C. y Gamarra, T. 2009. Fanerógamas del Perú: Taxonomía, Utilidad y Ecografía. Edita CONCYTEC. Primera edición. Pág. 1068.

Velasco G, Espinosa E. Evaluación de la fitorremediación en términos de remediación de carga orgánica, tratando aguas residuales contaminadas con hidrocarburos. Tesis de Tecnólogo en Química en la Universidad Tecnológica de Pereira. Colombia. 2010.

Abdel G, Hegazy A, Chaghaby G, Lima E. Factorial experimental design for biosorption of iron and zinc using Typha domingensis phytomass. Desalination 2009; 249: 343-347.

Verma V, Tewari S, Rai J. Ion exchange during heavy metal biosorption from aqueous solution by dried biomass of macrophytes. Biores Technol 2008; 99: 1932-1938.

Hammerly J, Leguizamon M, Maine M, Schiver D, Pizarro M. Decomposition rate of plant material in the Parana Medio River (Argentina) 1989; 183(3): 179-184.

Lora R. Contaminación por micronutrientes y posibles soluciones. Rev. U.D.C.A. Act & Div Cient 2007; 7(1): 5-20.

Salisbury B, Roos W. Fisiología de las Plantas. 3ra ed. México: Edit. Ibo América. 1994.

Figueroa C. Determinación de metals trazas (Ni, Cr, Cu y As) en Scirpus californicus. Tesis de Químico Farmacéutico. Universidad Austral de Chile. 2004.

Arduini I, Masoni A, Mariotti M, Ercoli L. Low cadmium application increase miscanthus growth and cadmium translocation. Environ Exp Bot 2004; 52:153-164.

Rucinska R, Waplak S, Gwozdz E. Free radical formation and activity of antioxidant enzymes in lupin roots exposed to lead. Plant Physiol Biochem 1999; 37: 187-194.

Varvara P. Increase ability of transgenic plants expressing the bacterial enzyme ACC deaminase to accumulate Cd, Co, Cu. Ni, Pb and Zn. Department of biology. University of Waterloo. Ontario, Canadá. N2 L 361. 2001.

Williams L, Pittman J, Hall J. Emerging mechanisms for heavy metal transport in plants. Biochim et Biophys Acta 2000; 1465: 104-126.

Xie Y, Yu D. The significance of lateral roots in phosphorus acquisition of water hyacinth (Eichhornia crassipes). Rev Aquat Bot 2003; 75: 311-321.

Wang X, Zhou Q. Ecotoxicological effects of cadmium on three ornamental plants. Chemosphere 2005; 60: 16-21.

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Publicado

2014-01-15

Número

Sección

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