Actividad antagónica in vitro de Clonostachys rosea sobre Fusarium oxysporum, Alternaria solani y Botrytis cinerea

Autores/as

  • Walter Flores
  • Julio Chico Universidad Nacional de Trujillo
  • Lisi Cerna Universidad Nacional de Trujillo

Resumen

En el control fúngico se hace  uso de sustancias químicas que producen deterioro del medio ambiente y esta actividad se puede disminuir  utilizando controladores biológicos. Por ello, se propuso evaluar la capacidad antagónica de Clonostachys rosea sobre el crecimiento de: Fusarium oxysporum,  Alternaria solani y Botrytis cinerea. Se realizaron aislamientos, monocultivos y microcultivos de los hongos fitopatógenos así como de las cepas de C. rosea en medios de cultivo Agar Papa Dextrosa (DPA) y aplicando cultivos duales. Se comprobó el efecto antagónico de C. rosea sobre  B. cinerea (grado 2) y F. oxysporum  (grado 2), así como, poca capacidad antagónica frente A. solani  (grado 3). Se concluye que C. rosea ejerce una franca actividad antagónica.

Palabras clave: Hongos, Antagonismo, Clonostachys rosea, Fusarium oxysporum, Alternaria solani, Botrytis cinerea

Citas

Agrios C. Fitopatología. 3ª ed. México DF: Edit. Limusa S.A. 2004.

Ordoñez V. Producción de enzimas microbianas y sus aplicaciones en la industria. En: II Cong Intern Microbiol Indust. Pontificia Universidad Javeriana. Colombia. 2000

Hernández-Lauzardo A, Bautista-Baños S, Velásquez-Del Valle M. Uso de microorganismos antagonistas en el control de enfermedades postcosecha en frutos. Rev Mex Fitopatol 2007; 25: 66-74

Arzate J, Michel A, Domínguez V, Santos O. Antagonismo de Trichoderma spp. sobre Mycosphaerella fijiensis Morelet, agente causal de la Sigatoka Negra del plátano (Musa sp.) in vitro e invernadero. Rev Mex Fitopatol 2006; 24: 98-104.

Fraire-Cordero M, Yánez M, Nieto D, Vázquez G. Hongos patógenos en fruto de “fresa” (Fragaria ananassa Duch.) en postcosecha. Rev Mex Fitopatol 2003; 2: 285-91

Llácer G, López M, Trapero A, Bello A. Patología Vegetal. 2a ed. México DF: Edit. Grupo Mundi-Prensa, S.A. 2000.

Molina G, Zaldúa S, Gonzáles G, Stowasser S. Selección de hongos antagonistas para el control biológico de Botrytis cinerea en viveros forestales en Chile. Laboratorio de Patología Forestal. Universidad de Concepción. Chile. 2006.

Chávez N, Wang A. Combate del moho gris (Botrytis cinerea) de la “fresa” mediante Gliocladium roseum. Rev Agron Costarricense 2004; 28(2): 73-85

Servicio Nacional de Sanidad Agraria (SENASA). Manual de procedimientos para verificación de calidad de agentes biológicos para el control de plagas agrícolas, producidos por laboratorios en convenio con el SENASA. Directiva General N° 24/2001-SENASA-DGSV-PNCB. Lima. Perú. 2001.

Barnett H, Hunter B. Illustrated Genera of Imperfect Fungi. 4ª ed. The American Phytopathological Society, S.A. EE.UU. 1998.

Ezziyyani M. Biocontrol mediante una combinación de microorganismos antagonistas. Tesis Doctoral. Universidad de Murcia-España. 2004.

Peng G, Sutton J, Evan P. Efectiveness of honeybees for applying the biocontrol agent Gliocladium roseum to strawberry flowers to supress Botrytis cinerea. Canadian J Plant Pathol 1992; 14(2):117-129.

Sutton J, Yu H. Gliocladium roseum: a cosmopolitan antagonist of Botrytis cinerea and other pathogens in crops. In: Cong Annual APS, División Caribe. San José, Costa Rica. 1997.

Cota L, Maffia L, Mizubuti E, Macedo P, et al. Control biológico de la podredumbre gris de la fresa por Clonostachys rosea en condiciones de campo. Control Biológico 2008; 46: 515-522.

Elad Y, Malathrakis N, Dik A. El control biológico de las enfermedades incitado-Botrytis y mildiú de los cultivos de invernadero. Crop Protection 1996; 15: 229-240

Molina G, Zaldúa S, González G, Sanfuentes E. Selección de hongos Antagonistas. Control biológico de Botrytis cinerea en viveros Forestales. Bosque 2006; 27(2): 126-134

Zaldúa S, Sanfuentes E. Control of Botrytis cinerea in Eucalyptus globulus mini-cuttings using Clonostachys and Trichoderma strains. Chilean J Agricul Res 2010; 70(4): 576-582

Selección de hongos antagonistas para el control biológico de Botrytis cinerea en viveros forestales en Chile. Disponible en: http://www.scielo.cl/pdf/bosque/v27n2/art07.pdf

Hidalgo N. Uso de Trichoderma spp. En combate biológico. San José. Universidad de Costa Rica; 1999. Disponible en: https://www.ibun.unal.edu.co/r2r7e.html

Jensen B, Knudsen I, Madsen M Biopriming of Infected Carrot Seed with an Antagonist, Clonostachys rosea, Selected for Control of Seedborne Alternaria spp. Phytopathol 2004; 94(6): 551-560

Moraga-Suazo P, Opazo A, Zaldúa S, González G, Sanfuentes E. Evaluation of Trichoderma spp. and Clonostachys spp. strains to control Fusarium circinatum in Pinus radiata seedlings. Chilean J Agricul Res 2011; 71(3): 412-417

Xue A. Biological Control of Pathogens Causing Root Rot Complex in Field Pea Using Clonostachys rosea Strain ACM941. Phytopathol 2003; 93(3): 329-335

Rodriguez Y, Osorio J. Evaluación de microorganismos por su potencial antagónico para el control biológico de Moniliophthora roreri (Cif) Evans et al. al agente causal de la moniliasis del cacao (Theobroma cacao L.). Fitopatología Colombiana 2004; 28(1):14-19

Rodríguez-Lacherre M, Chico-Ruíz J. Efecto antagónico in vitro de Clonostachys rosea sobre Botrytis cinerea procedente de cultivos de Vitis vinífera. REBIOL 2013; 33(2): 42-49

Descargas

Publicado

2015-07-14

Cómo citar

Flores, W., Chico, J., & Cerna, L. (2015). Actividad antagónica in vitro de Clonostachys rosea sobre Fusarium oxysporum, Alternaria solani y Botrytis cinerea. REBIOL, 35(1), 34-42. Recuperado a partir de https://revistas.unitru.edu.pe/index.php/facccbiol/article/view/873