Actividad antihelmíntica del extracto de Peumus boldus comparada con la piperazina citrato sobre el huevo y larva de Ascaris suum

Guillermo Delgado Díaz, Cesar A. Jara

Resumen


La ascariasis, enfermedad causada por Ascaris es una de las enfermedades con mayor prevalencia en cerdos domésticos de sistemas de producción masiva, siendo responsable de grandes pérdidas económicas. La presente investigación tiene como finalidad comparar el efecto del extracto hidroalcohólico de las hojas de Peumus boldus “Boldo” con el de la piperazina citrato, droga utilizada como antihelmíntico en algunos países, sobre: (i) la embrionación de huevos (formación de la larva), (ii) supervivencia in vitro de larvas L2 y (iii) infectividad in vivo de A. lumbricoides var. suum en ratón, Mus musculus BALB/c. Las hojas de “Boldo” utilizadas fueron importadas de Curicó, (Chile) y el extracto hidroalcohólico se obtuvo mediante el método de maceración. Los huevos de A. lumbricoides var. suum fueron obtenidos de parásitos hembras recolectadas en el Camal de Trujillo (Perú). La investigación se diseñó en tres sistemas: grupo experimental (extracto), control positivo (piperazina) y control negativo (SSF para el sistema de embrionación y la prueba in vivo y medio Minimun Esential Medium (MEM) para la prueba in vitro. El porcentaje de eficacia hallado en cada experimento fue: (i) para la embrionación, 11% en el grupo experimental (1.5mg del extracto), 10% con piperazina (1.5 mg) y 90% en el grupo control (SSF), (ii) para la acción in vitro frente a la L2, 03% en el grupo experimental (0.5 mg/mL del extracto), 02 con piperazina (0.5 mg/mL) y 99% en el grupo control (MEM) y (iii) para la eficacia in vivo, 0.05% en el grupo experimental (2 mg/kg de estracto), 0.05 en el control positivo (1.65 mg/kg de piperazina) y 91% en control (SSF). En todos los casos el porcentaje del grupo experimental y el control positivo no se diferenciaron estadísticamente (p<0,05) por lo que se concluye que tienen efecto similar.

 

Palabras clave: Ascariasis, Piperazina citrato, antihelmíntico.


Texto completo:

PDF

Referencias


Sánchez J. Etiología y epidemiologia de la ascariosis porcina. Mundoganadero. 2002; 145: 42-48.

Roepstorff A, Nansen P. Epidemiology and control of helminth infections in pig under intensive andnom-intensive production systems. Vet. Parasitol.1994; 54:69-85.

Ortega LM. Las parasitosis en la producción porcina actual (I): etiología y principales factores epidemiológicos implicados en el control. Rev. Anaporc, 1998; 182:157-187.

Stewart TB, Bidner TD, Southern LL, Simmons LA. Efficacy of fenbendazole against migrating Ascaris suum larvae in pigs. Am J Vet Res 1984; 45(5):984e6.

Thienpont D, Vanparijs O, Niemegeers C, Marsboom R. Biological and pharmacological properties of flubendazole. Arznei-Forschung 1978; 28(4):605e12.

Kennedy T, Lucas MJ, Froe DL. Comparative efficacy of pyrantel tartrate, ivermectin and fenbendazole against experimentally induced immature Ascaris suum in pigs. Agri-Practice 1987; 8(2):19e21.

Oakley GA. Activity of levamisole hydrochloride administered subcutaneously against A. suum infections in pigs. Vet Rec 1974; 95(9):190e3.

Ortega Q.F. E, Jirón L.0.Medicamentos antihelmínticos. Atención Med., 32. 1978.

Goth. A.; Farmacología Médica; 8a. Edición, España; Ediciones DOYMA.S.A.; 1979. Pág. 625. 630-633.

Modelo OMS de Información sobre Prescripción de Medicamentos, Medicamentos utilizados en las

Tagboto S. and Townson S. Antiparasitic properties of medicinal plants and other naturally occurring products. Adv Parasitol 2001; 50: 199-295.

Akhtar M.S, Iqbal Z., Khan M.N. and Lateef M. Anthelmintic activity of medicinal plants with particular reference to their use in animals in the Indo-Pakistan subcontinent. Small Ruminant Research 2000; 38: 99-107.

Athansiadou S., GithioriJ.and Kyriazakis I. Medicinal plants for helminth parasite control: facts and fiction. Animal 2007; 1:1392-1400.

Mali R.G. and Mehta A.A.A review of anthelmintic plants. Natural Product Radiance 2008; 7: 466-475.

Restrepo M, Isaza D. Estudio comparativo de flubendazol, oxantel-pirantel, albendazol y mebendazol en el tratamiento de helmintos transmitidos por el suelo. Acta Médica Colombiana. 1987. Vol. 12 No. 5 (344-352).

Moreno FC, Gordon IJ, Wright AD, Benvenutti MA, Saumell CA. Efecto antihelmíntico in vitro de extractos de plantas sobre larvas infectantes de nematodos gastrointestinales de rumiantes. Arch MedVet. 2010. 42, 155-163.

Dhar R.N., Garg L.C. and Pathak R.D. Anthelmintic activity of Carica papaya seeds. Indian J Pharm. 1965; 27: 335-336.

Gómez JR. Epazote (Chenopodium ambrosioides). Revisión a sus características morfológicas, actividad farmacológica, y biogénesis de su principal principio activo, ascaridol. Bol. Latinoam. Caribe Plant. Med. Aromat. Vol.7 (1) 2008.

Del Valle J M, Rogalinski T, Zetzl C, Brunner G. Extraction of boldo (Peumus boldus M.) leaves supercritical CO and hot pressurized 2 water. Food Research International 2005; 38 (2): 203-213.

Shukranul Mawa, Khairana Husain, Ibrahim Jantan. Ficus carica L. (Moraceae): Phytochemistry, Traditional Uses and Biological Activities. Review. 2013; 2-5.

Eguale T, Tilahun G, Debella A, Feleke A, Makonnen E. In vitro and in vivo anthelmintic activity of crude extracts of Coriandrums ativum against Haemonchus contortus. J Ethnopharmacol 2007; 110 (3): 428-33.

Kanojiya D, Shanker D, Sudan V, Jaiswal AK, ParasharR.In vitro and in vivo efficacy of extracts of leaves of Eucalyptus globulus on ovine gastrointestinal nematodes. Parasitol Res. 2015; 114(1):141-8.

Macedo LTF, Bevilaqua CML, B. de Oliveira LM, Camurça-Vasconcelos ALF, Vieira L da S. et.al. Atividade ovicida e larvicida in vitro do óleo essencial de Eucalyptus globulus sobre Haemonchus contortus. Rev. Bras. Parasitol. Vet., Jaboticabal.2009; 18(3) 62-64.

Sven Klimpel, Fathy Abdel-Ghaffar, Khaled AS, Al-Rasheid, Gülendem A, Fischer K, et.al. The effects of different plant extracts on nematodes. Parasitol Res.2011; 108:1047–1050.

Siccha Aguilar K. Terán V. Jara CA. Efecto del extracto etanólico de Ficus carica (Moraceae) sobre la formación de la larva 2 de Ascaris suum y Trichuris ovis , en condiciones de laboratorio. REBIOL 2015; 35(2): 62-68

Fairbairn, D., 1970 Physiological hatching of Ascaris lumbricoides eggs. In MAC INNIS, A. and VOGUE. 1970. Experiments and techniques in Parasitology W. N. Freeman and Co. San Francisco, pp. 21-23.

Degenhardt RT, Farias IV, Grassi LT, Franchi Jr GC, Nowill AE, Da S. Bittencourt CM, Wagner TM, De Souza MM, Cruza AB, Malheiros A. Characterization and evaluation of the cytotoxic potential of the essential oil of Chenopodium ambrosioides. Rev. Bras. Farmacogn. 2016;26(1):56-61.

Monzote L, Montalvo AM, Almanonni S, Scull R, Migdalia M, Abreu J. Activity of the Essential Oil from Chenopodium ambrosioides Grown in Cuba against Leishmania amazonensis. Chemotherapy. 2006;52(3):130-6

Lara Massara C, Salgado Ferreira R, Leonardo Guerra H, Dos Santos Carvalho O. In vitro study on thiabendazole action on viability of Ascaris lumbricoides (Lineu, 1758) eggs. Rev Soc Bras Med Trop. 2011;34(4): 319-322.

Lopez De Guimaraes D, Neyra Llanos RS, Romero Acevedo, JH. Ascaridiasis: comparación de la eficacia terapeutica entre paico y albendazol en niños de Huaraz. Rev. gastroenterol. 2001. 21(3): 212-219

López-Sáez José Antonio, Pérez-Soto Josué. Etnobotánica medicinal y parasitosis intestinales en la Isla de Ometepe, Nicaragua. Polibotánica. 2010; (30): 137-161.

Calderón CN, Jara CC. Actividad anti-helmíntica del extracto hidroalcohólico de las hojas de Poemus boldus (Monimiaceae) sobre larvas L2 de Ascaris suum. Peruv j parasitol. 2016; 24(1):e15-e23


Enlaces refback

  • No hay ningún enlace refback.