INDUCCION DE EMBRIONES SOMATICOS A PARTIR DE HOJAS DE Capsicum chinensis, UTILIZANDO DIFERENTES CONCENTRACIONES DE 2,4-DICLOROFENOXIACÉTICO Y 6-BENCIL AMINO PURINA

Brenda Alva Guzmán, Julio Roger Chico Ruiz, Lisi Cerna Rebaza

Resumen


RESUMEN Capsicum chinensis L. conocido como ―Aji Panca‖ es útil por sus propiedades pungentes y aromáticas; en seco se le utiliza, como base para las salsas y pastas, estimulante digestivo, sazonador y como antioxidante en carnes y otros; lo que demuestra ser un recurso de amplísimo rango de aprovechamiento para su industrialización y menor pérdida con relación al fruto fresco. La experiencia se inició con la siembra de semillas en macetas con tierra preparada y musgo. A los 25 días se introdujo dos pedazos de hojas jóvenes en medio basal (MS) con 2,4 –D a 1ppm y 0.5 ppm. Los callos obtenidos fueron traspasados a un nuevo medio suplementado con 2,4-D y BAP. Los resultados muestran que los callos embriogénicos se desarrollaron mejor en 1 ppm de 2,4 –D con un 76 % de desarrollo a los 16 días. El mejor tratamiento, para el desarrollo de los embriones, fue el de 5ppm de BAP a los 56 días de estar en dicho tratamiento. Además, se observó las diferentes etapas globular, acorazonada, torpedo, por las que pasa el embrión. Se concluye que la mejor combinación para la inducción de embriones somáticos en Capsicum chinensis es la de 1ppm de 2,4-D para formar callos embriogénicos y 5ppm de BAP en el crecimiento del embrión.
Palabras claves: Capsicum chinensis, 2,4 – Diclorofenoxiacético (2,4 –D), Bencil amino purina (BAP), Embriogénesis
ABSTRACT
Capsicum chinensis L., known as "Aji Panca", is useful for its pungent and aromatic properties; it is used in dry conditions as a base for sauces and pastas, it is a digestive stimulant and an antioxidant in seasoning meats and others; what proves to be a very wide range useful resource for industrialization and lower loss compared to fresh fruit. The experience started with seeds sowing in pots with prepared soil and moss. At 25 days two pieces of young leaves were introduced into basal medium (MS) with 2, 4-D at 1 ppm and 0.5 ppm. The calli were transferred to a new supplemented medium with 2, 4-D and BAP. The results show the embryogenic callus best developed to 1 ppm of 2, 4-D with a 76% growth at 16 days. The best treatment, for the embryos development, was 5 ppm BAP, 56 days of being in treatment. Also It was observed different stages, globular, heart-shaped, torpedo in the embryos process. This research concludes that the best combination for the induction of somatic embryos in Capsicum chinensis is 1 ppm of 2, 4-D to form embryogenic callus and 5ppm BAP to embryo growth.
Keywords: Capsicum chinensis, 2, 4- dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D), Benzyl amino purine (BAP), embryogenesis
Recibido: 05 de Mayo de 2014
Aceptado: 01 de Agosto de 2014


Texto completo:

PDF

Referencias


REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

Kothari S., Kachhwaha A., Ochoa N. 2010. Chilli peppers— a review on tissue culture and transgenesis. Biotechnol Adv 28(1):35–48.

Freire S. 2003. Aspectos básicos de la embriogénesis somática. Instituto de Biotecnología de las plantas; Universidad Central Marta Abreu de las Villas.

Marinuci L., Ruscitti M. y Abedini W. 2004. Morfogenesis in vitro de leguminosa forestales nativas de la Republica Argentina. Revista de la facultad de Agronomía, La Plata.

Chico J., Cerna L. 2012. Cultivo in vitro de las plantas forrajeras. Trujillo, Perú.

Azcón J., Bieto M. 2004. Fundamentos de fisiología vegetal. Universidad nacional de Barcelona

López G., Canto A., Barredo F., Zapata P., Montalvo M., Barahona F., Santana N. 2006. Direct somatic embryogenesis: a highly efficient protocol for in vitro regeneration of Habanero pepper (Capsicum chínense Jacq.). HortScience 41(6):1–7.

Sivori E., Montaldi E., Caso O. 1986. Fisiologia Vegetal. Argentina.

Soberon J., Quiroga N., Sampietro A., Vattuone A. 1995. Citocininas. Universidad nacional de Tucuman. Argentina

Aung H., Chang K., Baek J., Jo Y., Ki B.. 2012. Primary and secondary somatic embryogenesis in Chrysanthemum cv. Euro.

.Buyukalaca S, Mavituna F. 1996. Somatic Embryogenesis and plant regeneration of pepper in liquid media. Plant Cell Tissue Org Cult 46:227–235.

.Harini I., Sita L. 1993. Direct somatic embryogenesis and plant regeneration from immature embryos of chilli (C. annuum L). Plant S

Binzel M, Sankhla N, Joshi S, Sankhla D. 1996. Induction of direct somatic embryogenesis and plant regeneration in pepper (Capsicum annuum L.). Plant Cell Rep 15:536–540.

Schuabb A., Moura E., Barroso T., Santa C., Silveira V.. 2013. Polyethylene glycol effects on somatic embryogenesis of papaya hybrid UENF/CALIMAN. Brasil.

Jo J., Choi E., Choi D., Lee K. 1996. Somatic embryogenesis and plant regeneration from immature zygotic embryo culture in pepper (C. annuum L.). J Plant Biol 39:127–135.

Kintzios S., Drossopolous J., Lymperopoulos C. 2001. Effect of vitamins and inorganic micronutrients on callus growth and somatic embryogenesis from leaves of chilli pepper. Plant Cell Tissue Org Cult 67:55–62.

.Zapata Y., Canto A., Lopez G., Solıs A., Barahona F., Santana N. 2007. Somatic Embryogenesis in Habanero Pepper (C. chinense Jacq.) from cell suspensions. HortScience 42(2):1–5.

.Ochoa N., Ramırez R. 2001. In vitro chili pepper biotechnology. In Vitro Cell Dev Biol Plant 37(6):701–729.

Steinitz B., Ku¨sek M., Tabib Y., Paran I., Zelcer A. 2003. Pepper (C. annuum L.) regenerants obtained by direct somatic embryogenesis fail to develop a shoot. In Vitro Cell Dev Biol Plant 39:296–303.

Aviles S., Lecona C., Acanto A., López C., Santana N.. 2012. Morpho-histological and ultrastructural study on direct somatic embryogenesis of Capsicum chinense Jacq. in liquid medium.

.Heidmann I., Lange B., Lambalk J, Angenent G., Boutilier K. 2011. Efficient sweet pepper transformation mediated by the BABY BOOM transcription factor. Plant Cell Rep 30:1107– 1115.

Kaparakis G., Alderson P. 2008. Role for cytokinins in somatic embryogenesis of pepper (Capsicum annuum L.)? J Plant Growth Regul. 27:110–114. 24. .Murashige T. y Skoog F. 1962. A revise médium for rapid growth and bio-assays with tobacco tissue cultura. Physiol Plant.

Bespalhok J., Minora Y., Ganosa L.; ―Inducción de embriones somáticos de explantes de hoja de Stevia rebaudiana‖; Área de eco – fisiología, Instituto agronómico de Paraná, Londrina 1992.

Hutchinson, M.J.; T. Senaratna; J.M. Tsujita y P.K. Saxena. 1997. Somatic embryogenesis in liquid cultures of a tetraploid Alstroemeria. Plant Cell, Tissue and Organ Culture47, 293-297.

Soni, R.; J.P. Carmichael; Z.H. Shah y J.A.H. Murray. 1995. A family of cyclin-D homologs from plants differentially controlled by growth regulators and containing the conserved retinoblastoma protein interaction motif. Plant Cell 7, 85-103. 28. Rodriguez R, Alvarez C., Centeno M, Berros B., Rodriguez A. (2005) Embryogenesis somatica y estrategias para supercar las limitaciones en leñosas. Facultad de Ciencias Forestales.

Sharp, W.R.; M.R. Sondahl; L.S. Caldas y S.B. Maraffa. 1984. The physiology of in vitro asexual embryogenesis. Horicultural Reviews 2, 268-310.

Williams E.G., Maheswaran G. 1986. Somatic embryogenesis: factors influencing coordinated behavior of cells as an embryogenic group. Annals of Botany 57: 443-462

Komamine A., Matsumo M., Tsukahara M., Fujiwara A., Kawahara R., Ito M., Smith J., Nomura K., FujimurA T. 1985. Mechanisms of somatic embriogénesis in cell cultures- physiology, biochemistry and molecular biology. In: Tissue culture in forestry and agriculture. Ed. by R. Henke, K. Hughes, M. Constatin, A. Holloender. Plenun Press. p. 307-313.

Valverde R., Arias O., Thorpe T. 1992. Estudio histológico en callos de pejibaye. Agronomía Costarricense 16(2): 225-229

Gomez L., Valverde R., Aarias O., Thorpe T. 1992. Regeneración de tiquisque blanco (Xanthosoma sagittifolium) por embriogénesis somática. Agronomía Costarricense 16(2): 219-223.

McCain J.W., Hodges T.K. 1986. Anatomy of somatic embryos from maize embryo cultures. Bot. Gaz. 147(4): 453-460.

Mithila J., Murch S.J., Krishjan S., Saxena P. 2001. Recent advances in Pelargonium in vitro regeneration systems. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 67(1): 1-9.

Parameswari N. Acquisition of embryogenic competence during somatic embryogenesis Plant Cell Tiss Organ Cult 2007; 90:1–8

Chico-Ruìz J, Lòpez-Medina E, Cerna-Rebaza L, Condemarín-Montealegre C, Vargas-Aliaga C, Garcìa-Zare M. Morfología de callos embriogénicos inducidos a partir de hojas de Vitis vinifera var. italia, utilizando reguladores del crecimiento. REBIOL 2005; 25(1-2): 49-57

Wang TL, Cuming A. Embryogenesis. The generation of a plant. Oxford, UK: Bios Scientific Publish Lmt. 1996.

Laparra H, Bronner R, Hahne G. Histological análisis of somatic embryogenesis induced in leaf explants of Helianthus smithii Heisser. Protoplasma 1997; 196:1-11

Chico-Ruíz J, Cerna-Rebaza L, Tejada-Castillo J , Vega-Anhuamán A. Regeneración de plántulas, vía embriogénesis somática, a partir de hojas de fresa, Fragaria virginiana, utilizando ANA y BAP REBIOL 2008; 28(2):11-21

Jiménez V. Involvement of plant hormones and plant growth regulators on in vitro somatic embryogenesis Plant Growth Regulation 47:91–110

Chico-Ruíz J, Cerna-Rebaza L, García-Zare M. Producción de semillas sintéticas utilizando explantes no-embriogénicos. REBIOL 2006; 26(1-2):4-15

Jiménez, V, Thomas C. Participation of Plant Hormones in Determination and Progression of Somatic Embryogenesis Plant Cell Monogr (2)¡A. Mujib · J. ˇSamaj: Somatic Embryogenesis. Berlin: Springer-Verlag. 2005

.Anzidei M, Bennici A, Schiff S, Tani C, Mori B. Organogenesis and somatic embryogenesis in Foeniculum vulgare: histological observation of developing embryogenic callus. Plant Cell Tiss Organ Cult 2000; 61:69-79


Enlaces refback

  • No hay ningún enlace refback.


Licencia de Creative Commons SCIÉNDO, ciencia para el desarrollo, revista de la Universidad Nacional de Trujillo publica sus contenidos bajo licencia Creative Commons Reconocimiento-NoComercial 3.0.